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在205nm下,用四丁基氢氧化铵做流动相,基线总是很缓慢的上漂和下漂,很烦人,请问如何解决呢?
这是末端吸收,而且也是离子对试剂,容易造成基线噪音大等问题。这些俺都知道,
但如何解决呢?还是在这个波长下,根本没办法得到平稳漂亮的基线
2011年12月24日发布人:OSRCC_REE
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求助。
按照文献,使用2,4-二叔丁基苯酚与甲醛,甘氨酸反应,结果总是出来粘稠的东西,与文献描述不同。改用另一个文献的方法也还是不行。做了好多次,都出不来想要的东西。
有人做过这个反应或者类似的反应么?是我用的酸不够?需要加弱酸
2014年05月15日发布人:jiushi
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小弟现在在读研,研究的是高效液相分离手性物质的课题,想问问各位色友们,做液相这行有什么资格证的考试或者证书可以去考吗?
我想要是有这些证书,对找工作应该很有帮助。要是有的话我也想去考考~
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2015年09月24日发布人:kswl870
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[size=2][font=黑体]自己的认识,不知道对不对
1)临床研究阶段
临床批件获得后上临床,临床三期通过后获得《新药证书》。对于以研发为目的公司,《新药证书》可能就是业务的终点,以后凭借新药证书进行技术转移。若自己不生产药物
2015年08月07日发布人:3N4G
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可以通过什么方法让它重新恢复到正丁基锂吗??这个好容易就变质了,我们用的也不多所以这样太浪费了啊,变质就不要用了,再买一瓶,用完后密封放冰箱里保存,变成氢氧化锂或者是氧化锂不能再用,如果是遇水或空气变质的话就直接处理掉吧,这个近期不用密封
2014年06月05日发布人:vbnm
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。用Bio-rad的电转仪,全湿转,恒流105mA,3-3.5小时后,预染MARKER明显转到0.45uM的PVDF膜上,条带清楚。胶考染无蛋白,也无MARKER残留,但可见较弱的电泳通道,但膜用立春红染色不见任何蛋白,孵抗体后也不见荧光
2014年01月15日发布人:applebook=213
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显色,曝光,肉眼无荧光,无条带,老大帮忙分析下,谢谢[/color][/size],[size=2][color=Black]另外,loading buffer会不会对蛋白有影响,七月份同样条件可见明显肉眼荧光,loading buffer
2014年02月12日发布人:ffooll
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加药为什么要换无血清培养基?
有哪位群友可以详细说说看![/color][/size],[size=2][color=Black]
换成无血清培养基培养24h然后加药是为了让瓶内细胞
2012年02月18日发布人:薄荷侠
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请问条件是什么,会不会拔了甲基上的氢呢??
希望能有文献参考
非常感谢,服了。
你1eq的丁基锂怎么也不可能拔掉4位的H好么
而且低温条件丁基锂绝不可能掉甲基的H 这点放心好了。
至于你选择拔H的温度
先从-78开始 丁基锂
2014年03月02日发布人:jiankufanhan
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有一个反应,用丁基锂或者LDA拔氢,底物在四氢呋喃中溶解不好,还可以用什么溶剂?反应温度-78℃,溶解度不好有时也可以反应很好的,建议先试试THF,不要着急替换。,2-甲基THF,或者加少量的DME等,非均相的不一定不好。,也可以考虑使用
2014年02月19日发布人:shuishui