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做了两个月的WB,hif-1α还是没有做出来 ,按园子里的前辈方法做了还是没有,也不知道是不是抗体问题,先买了santa cruz ,后又买了novus的,所以在这想请教下哪位老师做出来
2013年06月08日发布人:pou
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2-D胶用考染,是否需要固定?[/b][/color][/size],[quote]原帖由 [i]yueban-1147[/i] 于 2014-1-8 16:12 发表 [url
2014年01月08日发布人:yueban-1147
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有一个蛋白,不论用考马斯蓝R250还是银氨染色都没有明显条带(蛋白浓度已远大于识别浓度),只有当蛋白非常非常浓时才会有一些不是很明显的条带。
这是什么原因啊?
那么还有什么染色方法进行染色
2013年06月26日发布人:101010
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好像没加防潮袋,而且原研片芯处方里有羟丙甲基纤维素,应当是湿法粘合剂,,我也觉得奇怪,影响因素显示其不怕高湿,怕高温,但高温引起酰胺基水解,应该可以控制的 你们是哪家公司,1.请教lz,杂质a明显增加是由水分引起的,这点确信么?
2.
2014年05月29日发布人:但是
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western blot 中跑胶考染后发现条带弥散?
是加样量太大了或每个孔道都加样了靠的太近了?
可后来我大大减少了加样量跑出的条带还是弥散的厉害,跟边上的孔道条带连在一块了
是不是胶
2014年05月31日发布人:iii_ii
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不同批号的样品,同样浓度检测,每针的出峰应该一样才对啊,除非样品在溶剂中不稳定。可是哪怕我现配现做,每针出峰都不同,会在不同时间出现小杂质峰,当然含量很小,主峰含量都在99.5%以上。这种现象正常吗?怎么解释?多谢交流。,1、首先
2011年04月17日发布人:baohailin
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现在很多EP,USP甚至CH.P的标准,都有用主成分峰的保留时间进行定位其它杂质的方法,但是实际工作中由于各个实验条件的差异,很难用相对保留时间完美的定性出特定的杂质,这就给结果的计算造成了困难。比如我主峰的保留时间是10min,他的杂质
2011年04月11日发布人:yanyu9808
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[size=2][color=Black][font=黑体]1 胶体考染
PAGE胶经G250胶体考染后可以获得无背景或很低的背景.估计其染色机制是因为在胶体染料和溶液中的自由扩散染料间形成平衡,溶液的少量自由染料穿透凝胶基质,有选择性
2013年08月16日发布人:am10
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请问各位,我用考马斯亮蓝G250测蛋白的量时,在用0.1mg/ml的BSA做蛋白的标准曲线时,为什么数值老是不稳,而且每次做的数值不一样。染液我已经过滤了[/b][/size
2014年01月22日发布人:30moonriver
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修饰,[size=2][color=Black]
为什么是乙酰化修饰?还有可能产生别的什么修饰吗?[/color][/size],一般是30min-1h,也可以过夜,[size=2][color=Black]
考染不需要另外固定的,染色
2013年12月23日发布人:小荷尖尖