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送蛋白样品出去测质谱,目的是测定分子量,用的是MALDI-TOP质谱仪,标准品与测试样图谱分别如下,回来后就给两个图谱,也木有啥分析,不知道是到底是分子量分析还是酶切后半胱氨酸分析,大家帮忙分析一下这谱图。,你先对照你的蛋白分子量看看啊
2015年12月04日发布人:aaby
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[color=Navy][size=5][font=黑体]谈核酸染料,最佳EB替代品 [转自 丁香园论坛]
对于这个问题,实验室一直在讨论,各种核酸染料各有优缺,到底应该选择哪一个实在是个让人头疼的问题!
因为工作需要
2011年08月24日发布人:岸上的鱼
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现代的原子荧光分光光度计,基本配备自动进样器、具备自动稀释功能。
实际工作中,你选用手动配标还是仪器的自动稀释功能?它们各有什么利弊呢?
欢迎讨论!!!,手动制标准系列溶液,感觉自己配置心里踏实一些
害怕仪器自动稀释时如果倍数太大
2015年09月28日发布人:shuishui
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我的流动相是A:100%甲醇 B:甲酸水
那么我的标品(或者样品)溶于100%甲醇后,在跑样之前有必要在标品(或者样品)中再加入一定的甲酸水让其体系与流动相的体系一样么?,一般情况下是不用的。
但是以防万一,你可以进一个甲醇溶解的
2011年12月01日发布人:magicfairy
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请问各位大侠,一般要先把标准品配制成母液,所说的浓溶液,这个浓度怎样确定呢?问题有点初级,先谢谢大家了!
[[i] 本帖最后由 miracle 于 2010-12-22 16:33 编辑 [/i]],母液多浓当然由稀释倍数决定。至于究竟
2010年12月24日发布人:sugar-tang
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[size=2]不知道为什么标准品有几个峰,而且还有倒峰?我试过关掉参比可还是一样,自认为操作过程对照品没有被污染!我的对照品是梓醇,用水溶的。[/size],[size=2]流动相和检测波长可能不合适。
[/size],[size
2015年11月02日发布人:qhyu
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我用甲醇:0.4%磷酸水(20:80)作为流动相分析绿原酸,波长327,进样10μl,分析绿原酸标品时,由于峰形不理想(有前伸峰),故加入不同量的流动相稀释,结果峰形好了,但保留时间却产生不同的变化,从16.730min到
2011年07月12日发布人:watpc
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[size=2]标准溶液用完后,如何清洗装标准品的容量瓶?如何确保他是否洗干净呢?[/size],[size=2]有清洗,主要是 针对这个标准溶液瓶子原来装的是什么,比如重金属标液,瓶子先浸泡,浸泡液一般是酸液(10%HNO3或者更高
2015年05月18日发布人:45778
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品中含有的这“种”物质定量,就要取这种物质的含量大于此定量限的样品量进样。比如你估计含量大约是50%,就至少要取2倍相当于标品的量进样了。,肯定要用标准品啊,个人理解
检测限就是指能够检测出来的浓度或质量的数值。当被检测
2009年10月13日发布人:gitde
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送蛋白样品出去测质谱,目的是测定分子量,用的是MALDI-TOP质谱仪,标准品与测试样图谱分别如下,回来后就给两个图谱,也木有啥分析,不知道是到底是分子量分析还是酶切后半胱氨酸分析,大家帮忙分析一下这谱图。,你先对照你的蛋白分子量看看啊
2015年12月03日发布人:大大