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提取藻粉脂肪酸的过程中,加入氯仿:甲醇:水=1:2:0.8乳化现象严重,静置,超声,过滤均无法破乳,感觉氯仿就分散在每个藻粉粒上,请问要怎么办呢?,朋友,你用点乙醇分散一下,看看呢,是不是极性太大了,你的提取液是根据什么资料配制的?好象
2010年06月27日发布人:smile1013
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我以前养细胞加双抗,后来细胞污染但不能即使发现,浪费很多时间,后来不加双抗,又怕污染.如何是好?[/b][/color][/size],[size=2][color=Black
2012年02月27日发布人:hot_hot_hot
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在做大麦饮料,加乳化剂的时候发现乳化剂都溶解不了,不知道怎么样向饮料中加入?乳化剂要经过怎么样的处理,所用乳化剂为分子蒸馏单甘脂和SPAN20。求指点,乳化剂要先在热水中溶好,然后再进行后面的操作的,做均质前先进胶体磨,只不过是希望能
2013年06月24日发布人:mico_11
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另外,各位战友,我们这边生产的一中软膏,单硬脂酸甘油酯由食品级换成湖南尔康的药用级(40%)后,制备过程中两相混合乳化时膏体变成似:果冻状,流动性很差,用化学纯时没这种现象,流动性很好,大家帮忙分析下原因,谢谢了!!各位 会不会是单甘脂的
2014年07月05日发布人:jkh123
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用高速剪切乳化机时,由于液面很低,它的定子贴着容器底部可以吗,还是要留一点间隙,转动时有震动,紧贴着,如果是玻璃容器有可能会碎。,必须留有空隙,有很多乳化均质机工作时是料体从均质机下面进往上面的出循环的。
不知跟你说的是一个装置。,必须
2014年02月16日发布人:teddy
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——10后,加入氯仿,刚摇了几下,就变成这样了(其实这是静置了半个多小时后的,刚开始比这还严重),是发生乳化了吗?那还能继续往后做吗?
求高手指点!
[/font][/size],[size=2]是的呀,跟我看过的乳化差不多一样的样子
2014年12月02日发布人:3N4G
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以往做western的时候,一抗都是37°孵育二小时,不过日前觉得抗体结合似乎不是很好,一抗比例已经提高到1:200了,考虑了一下想增加孵育的时间。
尝试了一下孵育三小时,但是结果条带同样
2014年06月18日发布人:zhihui小新
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最近分析有机样品,但是我们样品比较特殊,买不到有机标样。又不想微波消解,想通过制备乳化液的方式进样。想法是好的,但是一直不能制备出稳定的乳化液。我觉得我水相、油相、表面活性剂的比例应该是可以的,因为偶尔会制备出来,还能稳定十几天,但是
2014年11月17日发布人:小猫
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最近做western blot ,电泳,转膜感觉没问题,转出的膜用丽春红染色,条带清晰,用5%的脱脂奶粉封闭1小时,加一抗,一抗用TBS稀释,另加5%BSA,4度过夜,用
2013年10月09日发布人:ilovegaga
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一抗说明书上说4度保存,不要冻存。代理商说分装之后放在负20度保存。这几天做免疫印迹老做不出来,是不是抗体出问题了啊,我买的是santa cruz的一抗,现在心里好虚啊。[/color
2014年04月15日发布人:101010