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[size=2][color=Black]大家可以自己尝试,8M的尿素你扔到-18度的冰箱里面看看会有什么结果就行了。[/color][/size],[size=2][color=Black]低温,安静,平滑的变性盐下降,加上电场约束
2013年11月27日发布人:zsxan1990
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[size=2][color=Black][font=Verdana]
根据GE Helthcare的最新说明,双向电泳中总体来说有两种水化液选择:
1、8M尿素,2%CHAPS,0.5%IPG Buffer,0.002%溴酚蓝
2014年05月24日发布人:=pkchen=
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我的蛋白是带有His标签的膜蛋白,细菌培养IPTG诱导后总愿意形成包涵体,用6M尿素溶解后20000g离心20min后,上清中出现明显的目的蛋白,SDS和WESTERN的结果都很好,但是用Ni
2014年01月07日发布人:ero11
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室温搅拌15min,后超声(超6s,间隔3s,共270次),离心后的沉淀用水洗涤一次后用缓冲液A:8M尿素,50mM Tris,0.5M Nacl,10mM咪锉,pH8.0溶解包涵体发现有一部分溶解不了。换用缓冲液B:2M尿素,50mM
2013年12月16日发布人:Darcy
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[size=2][color=Black][b]以下是我包涵体蛋白纯化的结果,是不同浓度咪唑10、20、30、50、100、150、200、500和1000mM洗脱出来的。从100mM开始量增加,但有杂带。包涵体是溶解在8M尿素中的。这种
2013年04月10日发布人:987789
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:50mM PB,6M尿素,10mM Nacl,洗脱液:50mM PB,6M尿素,0-1M Nacl梯度洗脱,PH为6.5,包涵体溶解液:50mM PB,8M尿素,5mMβ-ME,PH为6.5,我的离子交换柱可装填料25ml的样子。[/font
2013年08月20日发布人:dotaaa
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小弟对软膏制剂一窍不通,老板让我配制40%尿素软膏用来软化甲板。
我用40%尿素,20%羊毛脂,2%SDS,凡士林,请哪位大侠告知组分有没有问题?尿素怎样溶解即配制流程如何?
感谢涕零!,兄弟!处方不对!你查一下10%尿素乳膏的处方对应一下!其它都很简单
2014年07月05日发布人:铃儿响叮当
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[size=2][color=Black]大家好:
请问配基为IDA的Ni琼脂糖凝胶可以用来纯化包涵体样品吗?如果样品是包涵体,平衡缓冲液及洗脱缓冲液都应加8M尿素以使包涵体变性,尿素是还原剂,这样会不会对IDA的Ni琼脂糖凝胶有影响
2013年12月25日发布人:remonte
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tris,1mM EDTA, 1% Triton×100,PH8.0 。每500ml菌用50ml破胞,3min。
二 洗涤包涵体(我准备洗涤到一定纯度后再复性,以避免复性后还要纯化)
buffer B: 10mM tris ,2M尿素
2013年10月29日发布人:whitesheep
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[size=2][color=Black][font=黑体]我的包含体就是溶解不了,8M尿素和6M盐酸胍都溶解不了,所以我想是不是要把盐酸胍的浓度调到8M呢?
还有就是,如果用盐酸胍溶解了,是否可以直接过NI-IDA柱呢?binging
2014年03月27日发布人:boom