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原 理将血清脂蛋白用脂类染料(如苏丹黑或油红O等)进行预染。再将预染过的血清置于琼脂糖凝胶板上进行电泳分离。通电后,脂蛋白向正极移动,并分离为几个区带。操 作1.预染血清:血清0.2ml加苏丹黑染色液0.2ml于小试管中,混合后置37
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把琼脂糖,即几乎不含硫酸根的主要成分为多糖的琼脂,溶于热水,倒入玻璃杯中,冷却制成的凝胶。融化后在37°C下可维持液态数小时,30°C时凝固成胶。即完成琼脂糖凝胶的配置。制成的小颗粒用于凝胶过滤,适于用sephadex不能分级分离的大分子
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全部原料溶解后加水补足。配制固体培养基时,先将上述已配好的液体培养基煮沸,再将称好的琼脂加入,继续加热至完全融化。并不断搅拌,以免琼脂糊底烧焦。
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先按上述配方配制液体培养基,临高压灭菌前加入琼脂糖 15g /L,同法高压蒸汽灭菌 20min。从高压灭菌器取出培养基时应轻轻旋动以使熔解的琼脂糖能均匀分布于整个培养基溶液中,应使培养基降温至50℃时,加入抗生素等不耐热的物质。为避免产生
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琼脂糖凝胶电泳一般都用EB染色,EB是以一定的比例结合到DNA分子上去的,大概是2.5个bp结合一个EB分子(记不清了),就是说电泳后的亮度是和DNA分子大小成正比的.也就是相同浓度DNA,分子量越大,足够EB则条带越亮;如果浓度不同的话,结合的EB量也可以决定亮度啊
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克隆实验中dna琼脂糖凝胶电泳的图(跑胶图)怎么看琼脂糖是线性的多聚物,基本结构是1,3连结的β-D-半乳糖和1,4连结的3,6-内醚-L-半乳糖交替连接起来的长链 。琼脂果胶是由许多更小的分子组成的异质混合物。琼脂糖在水中一般加热到90
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DNA提取产物经琼脂糖凝胶电泳条带有两条是怎么回事“从头拖到尾,另外一对引物就能做出来”说明不是引物之间形成二聚体,而是第一对引物的设计有问题(特异性很差).如果一定要扩增那个区,建议引物的位置向两边放一放.如果你没有好的设计软件,建议到Primer3去试试(目前最好的免费引物设计).
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制备琼脂糖凝胶:按照被分离DNA分子的大小,决定凝胶中琼脂糖的百分含量;一般情况下,可参考下表:琼脂糖的含量(%) 分离线状DNA分子的有效范围(Kb)0.3 60-50.6 20-10.7 10-0.80.9 7-0.51.2 6-0.41.5 4-0.22.0 3-0.1琼脂糖凝胶的浓度一般从0.5%到~2都可以,1%最常用,这里单位是g/100mL。
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拉曼光谱峰位对照表如下:拉曼光谱分析法是基于印度科学家C.V.拉曼(Raman)所发现的拉曼散射效应,对与入射光频率不同的散射光谱进行分析以得到分子振动、转动方面信息,并应用于分子结构研究的一种分析方法。电化学原位拉曼光谱法的测量装置主要
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该培养基含有乳糖、蔗糖和葡萄糖的比例为10:10:1,只能利用葡萄糖的细菌,分解葡萄糖产酸可使斜面先变黄,但因量少,生成的少量酸接触空气而氧化,加之细菌利用培养基中含氮物质,生成碱性产物,故使斜面后来又变红,底部由于是在厌氧状态下,酸类