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[size=2][color=Black][font=黑体]最近做了个降解亚甲基蓝或二甲酚橙的实验,最后所得的溶液显示为无色,就一定能认定最后溶液中不含有亚甲基蓝或二甲酚橙了吗?如不能,需做哪些测试呢?[/font][/color
2016年03月21日发布人:zhenxin
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%,恒压150V,40min
第一次转膜条件如下:
actin转膜350mA,70min
目的蛋白转膜350mA,150min(切胶的时候是从120到250切在一块)
结果:actin 条带清晰,余未见任何条带
然后用考马斯亮蓝染转
2013年08月02日发布人:喇叭花
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[size=2][color=Black][b]各位兄弟姐妹们,我最近在做一个90KD的蛋白,用beads将总蛋白里的gp91蛋白调出来,然后用调的beads去做western但什么结果都没有,向各位请教这样的实验需要注意什么?[/b][/color][/size],[size=2][color
2013年05月28日发布人:jude
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,40min
第一次转膜条件如下:
actin转膜350mA,70min
目的蛋白转膜350mA,150min(切胶的时候是从120到250切在一块)
结果:actin 条带清晰,余未见任何条带
然后用考马斯亮蓝染转过膜的
2013年11月23日发布人:applebook=213
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如图,为什么黑白如此明显,根本看不到细节,感觉是在拍的月球表面,影子太清楚了,请问是什么原因啊,是样品导电性还是SEM电镜没调试好?感谢!,什么材料?要看细节也可以适当提高放大倍数看局部
有可能是导电性不好,也有可能就是对比度和亮度没
2015年08月26日发布人:美人鱼
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各位大神,小弟一直在做Pd催化的实验,每次实验过后磁子上都沾有很多析出的Pd黑,很难清洗,有的感觉甚至渗入了搅拌子里头,求助各位大神有效的清洗办法~,王水泡,超声,拿出来洗洗,白白胖胖的,稀硝酸,搅拌0.5h后水洗即可。,使用稀硝酸泡
2014年03月02日发布人:adg
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[size=2][color=Black]
求助各位:
我用考马斯亮蓝测蛋白的数据是这样:
BSA的浓度 相应的OD值
0 0.891
10 1.142
20 1.196
30 1.368
40 1.487
50
2014年02月05日发布人:luoliqiong
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[size=2][color=Black][font=黑体]
快被WESTERN折腾死了,一个多月了,只出现过两次条带.最近的结果很奇怪,就是膜边缘荧光很亮,亮得开着红灯都看得见,暴光结果就是很黑很黑的一大片,或者边缘是黑的中间没条带
2014年02月03日发布人:星星点灯
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[size=2][color=Black]直接上图,
[img]C:\Documents and Settings\Administrator\桌面\yyyyyyyyyyyyyyyyy.bmp[/img]
1 - 0 h 取样 (取样均取1.5ml)
2 - 1 h 诱导 (加
2013年12月06日发布人:rxcc33
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我现在在测亮蓝,柠檬黄,苏丹红2号,用的是80%的甲醇,20%的水做流动相,反相C18色谱柱,进的是单标,这三种物质在都在3min之前出峰。我想请问怎么使它们的出峰时间推后?,很简单,因为你是反相色谱,即流动相的极性越大越有利于待测物的
2012年02月25日发布人:linoso913