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在做原子吸收时,有仪器检出限(很低),方法检出限,那在报数据时最抵的报出数据如何报出,是以什么为根据,在做原子吸收时,有仪器检出限(很低),方法检出限,那在报数据时最抵的报出数据如何报出,是以什么为根据,以方法检出限报出最为保险,不会产生
2015年04月25日发布人:adg
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、回收率的接受范围?依据什么来定?有的定80-120%,有的定90-110%,也有的定95-105%,大家都选哪种?为什么?,1加标回收吧!2可溶性测试一般都没有标准物质,一般留样比如能力验证剩余样品或者测量审核剩余样品3对于第三点这个看物质
2015年03月16日发布人:小红
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?[/size],[size=2]
(1)提取新鲜心肌组织细胞内线粒体的方案:心肌组织切碎后在4℃介质(0.25mol/L蔗糖、10mmol/L Tris-HCl pH7.4、0-4℃)中制备心肌组织匀浆。匀浆经750g、离心10min后留上清,以9000g离心20min后留沉淀,重新悬浮后以9000g再离心20min,弃上清得线粒体.全部操作于
2014年09月02日发布人:冰岛老叟
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发怒,是用别人的错误惩罚自己;烦恼,是用自己的过失折磨自己;后悔,是用无奈的往事摧残自己;忧虑,是用虚拟的风险惊吓自己;孤独,是用自制的牢房禁锢自己;自卑,是用别人的长处抵毁自己。摒弃这些,你就会轻松许多!,发怒,是用别人的错误惩罚自己:),自找,积极心态只能自己寻找,何必跟自己过不去??68.GIF,调整心态,好说,不好做,这样的解释是我的心情平静了不少
2011年03月22日发布人:知性美
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=2][color=Black]
是不是板子没刷干净,与胶之间有些空隙导致的呢?我出现过这种情况,不是很常见,不过我是小板子,在加样品时用枪头抵的太用力了,就这样了,大板子用加样器应该不会[/color][/size],[size=2
2014年07月05日发布人:莓菓333
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,来培养。
这方便分离菌体。
2.离心,收集菌体,弃掉培养基,这个一定要的。
否则等液体蒸发了,会在基底上留上一层培养基的薄膜。
3.再用0.9% NaCl 或无菌水悬浮菌体,最终OD600=1-2吧,
不能太浓了,否则会一大堆
2015年07月01日发布人:886爱
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,应该是可以长的很满的。按照悬浮细胞的操作规范来,每次换液时不要吸去所有的培养基,留1/3加2/3新的培养基,应该会好的。[/color][/size],细胞长不开,你试试多传一些
2012年09月09日发布人:IAM007
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悬浮或贴壁细胞酶解处理成悬浮细胞后,离心收取1-2X10^6细胞,PBS洗一次,留100-200ul PBS, 涡旋混合器重新悬浮细胞沉淀,边混合边逐滴加入5ml 70
2012年01月18日发布人:分子式
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你可以联系82312005,,楼上留的电话是错的吧,我已经打过了,对方说不是,西安理工作不了,他们的电镜是六硼化镧的,压根没有扫描透射附件。在西安只有交大材料学院郭老师那里能做。,西安交大电介质中心明年就可以了,他们要买国内现在最先进的2
2015年10月09日发布人:nsdm
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→Chemistry→选择需要的元素→OK[/font][/size],[size=2]2.双击打开需要的标准卡片→Lines→Export→得到标准卡片的txt数据[/size],[size=2]删去上半部分,只留数据,并保存[/size
2016年02月17日发布人:dmg