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各位帮帮忙,我用了反相硅胶柱(ODS)分离样品,用的体系是甲醇-水,从纯水开始直到100%的甲醇,当在100%甲醇的洗脱下,样品还是不能全部下来,结果把反相硅胶柱给污染了,请问一下各位,有什么方法可以使其再生啊??反相材料实在是太贵了,怕老板教训啊,拜托了,各位!!!!
谢谢各位啊,不过,我说
2010年08月06日发布人:llhy_510080988
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[size=2]相关检测项目:
收购 百度
各位前辈,今天看瓦里安的资料百度里说被安捷伦收购了但是还有说被布鲁克收购了?到底咋回事?求大神明示啊[/size],[size=2]之前有新闻说的是安捷伦收购了瓦里安的真空系统
2015年12月17日发布人:feixi
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[size=2][color=Black][b]
细胞被真菌污染,很典型,发几张给大家看看,互相学习吧。
培养液表面有一层膜: [/b][/color][/size],[size=2][color=Black][b]典型的串珠
2012年01月18日发布人:DNA
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(是人属还是鼠属)very important]。比如说一般实体瘤的风险就很大!
我以前的一个师姐在做小鼠体内肿瘤试验的时候,不小心被抽艾氏腹水癌(鼠属的)的针头扎破了,有出血点,刚开始也很害怕,就把伤口的血挤净,用75%的酒精消毒伤口,后来什么事也没有!(真实的事情!!)
当时,师姐的老板一个药理的主任,说问题 不大,如果是人的
2012年07月25日发布人:66小飞侠
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[size=2][b]
细胞被真菌污染,很典型,发几张给大家看看,互相学习吧。
培养液表面有一层膜:[/b][/size],[size=2][b]
典型的串珠样结构:[/b][/size],[size=2][b]
典型的串珠样结构
2015年11月17日发布人:cwcwcww
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[size=2][color=Black][b]
小弟做一个抗肿瘤药物,通过流式发现细胞被阻滞在G2/M期(左图对照,右图加药后48h检测),看了一些文献,很多是说“细胞被阻滞在G2/M期后,会诱导凋亡”,但是我通过多个时间点检
2012年05月31日发布人:plaa
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[size=2][color=Black][b]我在实验室搬家之后开始复苏细胞,细胞在复苏第48小时出现肉眼可见的霉菌菌落,细胞是在27度孵箱生长,由于是新配置的培养基加有青链及两性霉素没有丢弃培养基.第二次重新复苏细胞,结果在第48小时又看见了大小相仿的霉菌菌落.听师兄说这种情况可能是细胞株污染
2012年08月24日发布人:蒲公英
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位置。可是仅此(run 10% SDS Page)无法证明该蛋白就是被磷酸化了。我也尝试过做IEF,无果。试图ip分离该蛋白做质谱,奇怪的是的出来结果竟然是N多种蛋白的混合物,没有我的目的蛋白! 请问大家还有其他办法能证明该蛋白在实验组的表现
2013年05月23日发布人:hustwb
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[size=2]最近PCR做的比较多,像启动子克隆,RT-PCR,BSP,MSP都做过,引物多数由自己设计,稍有一些心得。下面就引物设计中一些可能被大家忽视的细节发表一些愚见。
1. 引物的GT含量对形成引物二聚体有很大影响。
我们
2015年08月31日发布人:园丁##
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一般液相色谱C18反相柱被污染,大家都建议用异丙醇冲洗,但流动相的配制里并不用异丙醇当洗脱液,我只知道异丙醇粘度大,其他的并不清楚是什么原因,希望大家给予帮助,让我明白其中的原理所在。谢谢各位!,先试试甲醇或者乙腈吧,异丙醇还是蛮贵的
2011年01月27日发布人:分析工