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[size=2][color=Black]请教各位大侠:我最近在做P44/42-ERK,分子量如此接近,怎样才能把两条目的条带分开?分离胶的浓度如何?我用的是湿转,电泳,转膜条件应该怎样?非常感谢![/color][/size
2013年11月24日发布人:viviwang1987
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透明质酸HA用甲基丙烯酸酐(MA)改性,过程是在PH为8,4摄氏度条件下往HA水溶液中加入MA,然后乙醇冲洗,再用水溶解透析,最后冻干。最后出来的样品无法溶解于水,会有一些絮状沉淀,对光看呈丝状,可离心沉淀下来,用乙醇再次洗该样品后溶解
2016年01月02日发布人:huali
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[size=2]很郁闷很郁闷啊。。。
我自己提的手参DNA用来pcr。。。引物是ITS1和ITS2.。。
理论上不是应该是750左右的条带么,为什么我的那么小?而且连引物带都没有?
下面是用同一次提的两个DNA样品做的两次PCR
2014年08月30日发布人:standbyme
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一般液相色谱C18反相柱被污染,大家都建议用异丙醇冲洗,但流动相的配制里并不用异丙醇当洗脱液,我只知道异丙醇粘度大,其他的并不清楚是什么原因,希望大家给予帮助,让我明白其中的原理所在。谢谢各位!,先试试甲醇或者乙腈吧,异丙醇还是蛮贵的
2011年01月27日发布人:分析工
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联系。大家看一下下面的图。
R1主要代表粘连细胞
R2主要代表G2/M期细胞
R3主要代表G0/G1期细胞
R4主要代表s期细胞
R5主要代表凋亡细胞
我说“主要”是因为大家可以看到设的gate后各个gate中的细胞有位置重叠
2012年01月31日发布人:了了
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[size=2]
各位大虾,请问在提取组织中的病毒RNA时,加异丙醇后即出现絮状沉淀,可能是吸入了蛋白质,还有必要继续往后做吗?还能提得出RNA吗?或者能不能把絮状沉淀低速离心去掉,取上清再接着做呢?请高手指点一二啊![/size
2016年02月09日发布人:@STAR@
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的样子。现在害的我只能去外校一个最大放到2万倍的地方测扫描。我系s4800一般用电压1千伏,外校2万伏。不知道和这个有没有关系。,我在北师大做的4800的SEM,可以放大到11万倍没问题.
电压可以根据样品不同调节.
图像飘是不是
2015年01月16日发布人:哈达
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怎么配才能使2ml溶液中含12.2%(v/v)甲酸的1M的2-乙基丁酸?
请教一下,用内标法做GC,最终要使2ml样品溶液中加入含12.2%(v/v)甲酸的1M的2-乙基丁酸做内标,想了好时间,算不出来,大家帮帮忙吧,急,先谢谢
2010年06月15日发布人:shzyxq
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各位大师:
有没有哪位大师见过用浸膏:辅料=2:1,用湿法制粒机,一次制软材的。有的话能不能说说具体工艺。尤其是浸膏是怎样提取的。(浸膏是湿浸膏没有经过干燥粉碎的) 非常感谢!,直接用清膏来微波干燥,得干膏粉,现在的工艺就是不能
2014年05月30日发布人:但是
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[size=2][color=Black][font=黑体]
我做了三周的甲基化特异性PCR了,可用修饰完的DNA做模板,甲基化、非甲基化引物都扩不出来,而野生型引物确能扩出来,引物设计应该没问题,我现在高度怀疑是亚硫酸盐修饰有问题
2016年04月07日发布人:小荷尖尖