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[size=2]因为基因片段是固定的,两侧的酶切位点也是固定的,所以别无选择。但引物间形成了比较多的二聚体,使产物很少。
这种情况该怎么处理啊[/size],[size=2]
不能重新设计就试试降低一下引物浓度,调整一下体系如优化
2015年06月03日发布人:jude
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该条带与二硫键无关,应为共价偶联形成的二聚体条带。3D结构显示一单体的N端与另一单体的C端距离很近,有很强的相互作用,怀疑为N端NH2与C端COOH偶联所致;但该条带在水溶液放置过程中慢慢增多,理论上讲在水溶液中COOH很难和NH2形成酰胺键
2013年04月24日发布人:langlang
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这是我把2-氨基-3-氯-5-三氟甲基吡啶溶于乙醇测出来的紫外图谱,从图谱上看是不对的。大家帮我分析分析原因。乙醇2ml,样品20mg。是浓度的原因吗?,从“图谱”上看不对?是指的标准图谱吗?把标准传上来看看。
我认为该图是对的,你的
2011年12月05日发布人:weilihua07001
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二聚体有活性,但是我却无法解释这一现象,不知各位高人有什么好的方法和意见,请大家给我出一出主意,谢谢大家了[/font][/color][/size],[size=2][color=Black]
很多蛋白质是二聚体或多聚体有活性, 是正常的
2014年01月07日发布人:lorri
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[size=2][color=Black]
我使用NI亲和层析可得到比较纯的蛋白单体和二聚体,二聚体大小为60KD,单体30KD,我们的目的蛋白为二聚体。请教分离蛋白单体和二聚体可以从哪些性质入手,采用什么方法(如考虑大小的区别,采用
2014年02月28日发布人:dodoit
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ul
taq酶:0.1ul
退火温度:55度,30S[/size],[size=2]
减少引物二聚体的方法
1. 从引物自身着手,重新设计引物,这是最根本解决这一问题的办法;
2. 可能模板有问题;
3. 模板浓度过小,适当加大模板量
2016年03月03日发布人:caihong
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Premier 5.00 设计的,评分100。[/size],[size=2]建议用oligo再分析一下引物,看3'端有没有二聚体,如果引物二聚体条带很亮的话,那肯定是引物与引物之间进行配对阔增了,根本就没有与模板结合,因为如果退火温度
2015年11月10日发布人:wiwi
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[size=2]我的引物是75bp的长引物,pcr的时候总是出现很亮的引物二聚体,比目的条带还亮。我试用过把引物煮沸5分钟迅速冷冻再加样的方法,发现没什么区别,还是很亮。是不是长引物就很难消除引物二聚体啊。求教~~~~[/size
2015年01月14日发布人:jebel
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问问各位有什么手套能有效的防三氯甲烷渗透的,大家都用什么品牌的,谢谢,建议用丁腈手套,耐二氯甲烷,氯仿等溶解力极强的液体,谢谢啊,我们现在用的就是丁腈手套,但是这种手套好像不能有效的防氯仿和四氯化碳,几分钟就给渗透了。不知道你说的是多少
2011年09月15日发布人:chemistry9821
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[url=http://www.antpedia.com/?mygroup-10]气相色谱[/url]中,测定1,2-二氯乙烷的浓度,选择什么样的溶剂比较合适,不可以用水。我用了无水乙醇,乙腈,正己烷,并且用了不同的配比,但是它们的出峰
2010年09月17日发布人:zhaohaimi