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,35-37度,16小时,做酶切梯度,找出最佳酶量。
2、咪唑对EK活性有影响,应该去除。透析沉淀情况不明,可能和pH有关,可以考虑提高pH。
3、酶切是融合蛋白不用做稀释,我用20-3
2013年11月21日发布人:花想容
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本人做酮和伯胺的希夫碱反应,但是试了好多种方法,做了好多次,都失败了,
想了好久也没想明白可能问题出在哪?
哪位大侠做过类似的反应,给点指导,指点一下我可能哪个细节出现问题。
不甚感激。,我有一个反应也
2014年06月10日发布人:shuishui
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然后蒸出 加入钠 二苯甲酮 回流2h后变为绿色 继续回流3h后变为黄色
然后两小时不变色 为啥呢??
不是应该变为蓝紫色的么?
求高手解答,格式试剂已经做出来了,
当时一直不变色 估计是二苯甲酮加的有点
2014年06月22日发布人:jiushi
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里加了500mM的咪唑。但纯化出来点显色平板观察发现只有稍微变色,说明活性不是很高。
所以想问一下咪唑会不会对蛋白的活性产生影响?[/b][/color][/size],[size=2][color=Black]
不会,可能是你反应体系中
2014年01月15日发布人:菠萝喵
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均为108%-115%,请问这个可能是什么原因造成的,是混不匀吗?个人认为没问题啊,原来还看到过园子里有战友说过混粉均匀,压出来片子含量偏低,我这个是偏高,有什么好的解决办法吗?,1,批量做到多大?
2,使用什么辅料?
3
2014年03月12日发布人:jkh123
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[size=2][color=Black]105克的邻菲罗啉溶于100毫升水[/color][/size],[size=2]1,先加热溶解,再冷却定容;
2,先用乙醇溶解,再用蒸馏水定容(现配现用)[/size],[quote]原帖由
2016年03月08日发布人:生物迷
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[size=2]大家帮忙找找,哪个是“吲哚啉”???[/size],[size=2]楼主这个是用非极性柱还是极性柱?[/size],[quote]原帖由 [i]65urh[/i] 于 2015-12-19 15:08 发表 [url
2015年12月19日发布人:端口
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[size=2][color=Black][font=黑体]
各位战友,最近纯化一批蛋白,想用来做一下体外测活。但是蛋白是用镍柱纯化的,最后收集的样品缓冲中含有咪唑。
虽然用超滤管浓缩过,但是无法保证咪唑已经除干净了,在此请教一下
2013年11月29日发布人:豆龟
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[b][color=Black][size=2]
Ni柱进行蛋白洗脱,咪唑最高的浓度能达到多少阿,我用Qiagen的Ni-NTA,咪唑浓度已经达到500mM,还是没能很好的洗脱,是不是还要提高浓度阿?谢谢![/size][/color
2014年05月06日发布人:douding66
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[size=2][color=Black][font=Impact]
用Ni sepharose 6 fast flow纯化His-tag 蛋白,刚开始做,先做了咪唑浓度梯度的优化,用了20,60,100,200,300mM的咪唑浓度
2013年07月22日发布人:shanzhapia696