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同上,如题[/b][/color][/size],[size=2][color=Black]
实际操作中没有这么严重的,我们实验室都是一直放在4度,直至用完。
我个人建议配好后,分装
2012年09月09日发布人:969
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℃,汽化都220℃
乙酸乙酯和乙缩醛重叠,峰很窄也对称,一点分开的意思都没有,试过调温度和流速,还是没有用,其他的成分都还分得挺好。
哪位做过的朋友指点指点怎么分开这两个成分。,将初始柱温度降低到30度看分离如何,还不行的话必然要换柱子
2010年01月06日发布人:358uwcj
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使用的是安捷伦1100,梯度洗脱,走乙腈时柱压不稳,请问是何原因?求解决办法~,那是你的另一相的盐的浓度太高了,有析出,影响了单向阀!,泵排一下气泡,尤其是连乙腈相的管路。如果不行,就将该泵的单向阀卸下来超声一下。,是不是流动相黏度变化
2011年12月24日发布人:1985lhyan
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保存呢.
请大侠指教~~~,一般都用甲醇保持的较多。尚未聽過用乙腈,使用缓冲液或含盐的流动相,实验完成后应用10%的甲醇/水冲洗30分钟,洗掉色谱柱中的盐,再用甲醇冲洗30分钟。注意:不能用纯水冲洗柱子,应该在水中加入10%的甲醇
2013年07月28日发布人:hey_bye
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异源蛋白的表达是个很复杂的问题,有许许多多的影响因素,而且由于蛋白本身千差万别,很难有一个很完善或很标准的流程方法。
另外,表达的宿主也是多种多样,目前比较常用的包括E.coli,酵母
2014年09月30日发布人:bamboo16
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用N-甲基吗啉和氯甲酸异丁酯制备多肽,产物结构式如下:
文献中用氯仿/乙醚重结晶,我试着用氯仿/乙醚点板,出现这样的情况:
这是什么情况??
换了乙酸乙酯/石油醚,点在基线,上不去。我该怎么办呢?
另外,合成得到的产物是
2016年04月03日发布人:xgy412
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关于样品溶解后的浓度表示方法。
1g的样品,加酸完全溶解后,定容至1000mL,浓度为1000μg/mL。
大家是记为1000μg/mL还是1000ppm?,你这个浓度就是1mg/ml,没必要写成1000ppm。
[[i] 本帖
2012年02月08日发布人:Erica2088wr
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[size=2][font=黑体][b]请教下各位达人,我用waters 的XBridge BEH300 C4柱子,水-乙腈(含0.1%甲酸)作为流动相梯度洗脱分离某种蛋白,不管怎么变梯度,随着乙腈的增高,基线总在进样6min后突然抬起
2015年11月01日发布人:阿福
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用N-甲基吗啉和氯甲酸异丁酯制备多肽,产物结构式如下:
文献中用氯仿/乙醚重结晶,我试着用氯仿/乙醚点板,出现这样的情况:
这是什么情况??
换了乙酸乙酯/石油醚,点在基线,上不去。我该怎么办呢?
另外,合成得到的产物是
2016年01月19日发布人:兔子
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我现在又200ml的浸膏,该用多少的水悬溶?该用多少的溶剂(乙酸乙酯,正丁醇)萃取?非常感谢,800 ml 水分散
等体积有机溶剂 萃取 即1000 ml,看你浸膏的具体情况了,先加少量的水稀释,之后等体积有机相萃取,要这么多的水啊
2011年05月27日发布人:sctc2007_g