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保存呢.
请大侠指教~~~,一般都用甲醇保持的较多。尚未聽過用乙腈,使用缓冲液或含盐的流动相,实验完成后应用10%的甲醇/水冲洗30分钟,洗掉色谱柱中的盐,再用甲醇冲洗30分钟。注意:不能用纯水冲洗柱子,应该在水中加入10%的甲醇
2013年07月28日发布人:hey_bye
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关于样品溶解后的浓度表示方法。
1g的样品,加酸完全溶解后,定容至1000mL,浓度为1000μg/mL。
大家是记为1000μg/mL还是1000ppm?,你这个浓度就是1mg/ml,没必要写成1000ppm。
[[i] 本帖
2012年02月08日发布人:Erica2088wr
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[size=2]听说容易熄火,神马道理呢?[/size],[size=2]FPD熄火的可能原因有哪些?最近做能力验证,经常运行过程中熄火,重新点火就好了,很郁闷[/size],[size=2]安捷伦快速检测有机磷就是用乙腈做溶剂的,直接用
2015年06月24日发布人:cbou876
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,磷酸盐很容易会析出来。,可以先用热水冲一下管路,再换乙腈冲,祝顺利。,过虑白头是在排液阀那里,5ml/min排水如果压力超过10bar,过滤白头要换。先换了过滤白头再说,再看看排液压力。如果排液压力正常,柱子不接换二通,压力超的话就是管路堵了,要排查。,你用
2015年04月02日发布人:落叶无声
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6加正反向都是U6的引物后就可以跑出来了,但是CT值一直不高,30以后。这是为什么?
还有一个问题是U6在ployA加尾的过程中应
2015年11月07日发布人:dotaaa
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我们用的流动相是乙腈,水和很少量的磷酸,盛装流动相的瓶子是玻璃瓶,在瓶周围的桌面上以及瓶底和洒落有流动相的台面上都有白色物质,好像是挥发的流动相产生的,但是乙腈和水不可能产生这白色物质的呀,大家帮我分析一下是什么原因造成的呢,乙腈和瓶子或
2010年01月28日发布人:michael_b_rex
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[size=2][font=黑体][b]请教下各位达人,我用waters 的XBridge BEH300 C4柱子,水-乙腈(含0.1%甲酸)作为流动相梯度洗脱分离某种蛋白,不管怎么变梯度,随着乙腈的增高,基线总在进样6min后突然抬起
2015年11月01日发布人:阿福
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有人说甲醇的背景更低一些,我想确认一下是不是这样子。。。,这个主要是看样品的性质吧!
再者就是正离子模式一般用甲醇,负离子模式一般用乙腈好些,光从质谱直接进样看,甲醇的背景噪音是要高些。但一般情况下也没太大差别,单从离子化和质谱响应角度
2010年01月30日发布人:kidpk
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[size=2]进样是提取物,检测波长204nm,乙腈-0.1%磷酸水梯度洗脱,15-16min时乙腈从50%-100%,结果出现几大峰,信号响应有400毫伏吧,后来走空白也是这样滴...
是不是乙腈洗脱能力太强,把柱中杂质给都
2015年11月23日发布人:wsll
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来染色,对小肽染色备受青睐,常用的方法是2克g250溶解在1升蒸馏水中,再加1mol/l硫酸。搅拌3小时后过滤,此时溶液是棕色,在加220ml 10mol 氢氧化钠。最后加310ml 100%三氯醋酸,此时是蓝绿色,备用。。。。[/font
2014年06月09日发布人:土坷垃