-
我用壬基酚和二溴乙烷反应生成双醚,摩尔比2.01:1,加入20%的NaOH溶液,2g四丁基溴化铵作为相转移催化剂,反应温度100℃,反应四小时,得到的产物下层是清液,上层是青色絮状固体,最上面有一层墨绿色的东西。反应产物不应该是分为两相的
2014年02月15日发布人:shuishui
-
坩埚太大了,10g尿素起码你的坩埚快要满才行,必须盖上盖子。然后是你的升温速率太低,我10℃/min 10g才得0.3g. 文献还有用10-25℃/min的在600℃下都可以得到。最后,我们组也一直在做g-C3N4材料。直接使用二氰二胺或三聚
2016年02月17日发布人:damingxia0904
-
用PEG400作溶剂,溴代正葵烷与叠氮化钠在常温下反应,按文献上做的,结果点板看不到产物点,求大虫指点,PEG400是啥。没用过,一般都用DMF做溶剂,80°左右反应,你那个底物的话,估计底物和产物是一个点,都是极性很小的吧,一般叠氮产物
2014年03月15日发布人:iop
-
[size=4][color=Navy][b]请教,超过溴酚兰的亮带是什么? [转载]
近日,做PCR扩增,电泳后发现除了目的条带外,在溴酚蓝前面(超过溴酚蓝)还有一条带,且非常亮,多次重复均如此,特别是,每次的阴性对照(加水
2011年09月22日发布人:知了知了
-
[size=2]各位老师,做面粉中溴氰菊酯检测时采用什么色谱条件啊?我用的是TG一17O1MS柱按标准怎么做不出来呢?[/size],[size=2]可以参考NY761的方法设置[/size],[size=2]溴氰菊酯要用-1、-5柱来做
2015年11月05日发布人:bojitu
-
[size=2][color=Black]
各位战友,最近实验遇到了困难,7kD多肽要用电泳检测,师兄说检测小肽要用Tricine-SDS-PAGE,可是我做了一个多月了,一直都没摸索好条件,主要问题是:
1. 跑不动(电泳2h溴芬兰
2014年03月27日发布人:duoduo
-
做了一个2氨基,4氰基5溴吡啶五位上硼酸酯,有产品,但是有掉溴的,极性相差很小,过柱子分很困难,请问怎么能避免掉溴,掉溴跟什么有关,条件是二氧六环,醋酸钾,三环己基膦,醋酸钯,都除水了。,掉溴是因为你的Pd催化剂插入后没跟硼的原料反应
2014年02月21日发布人:adg
-
取96%的异戊酸溶液5微升,放在500mL的三角烧瓶中,封口,两小时后怎样测试三角烧瓶中异戊酸的浓度?,这不是类似于顶空进样吗?,[quote]原帖由 [i]sara_l[/i] 于 2009-12-17 15:16 发表 [url
2009年12月23日发布人:sara_l
-
求二异丙胺除水的详细步骤和LDA合成的文献或者详细步骤。跪求!在线等。,我们都是直接丢些KOH,过夜就可以用了,制备lda可能对无水要求比较严格,这样操作能确保无水吗?,先买瓶装的i-PrNH2,然后倒入500ml的圆底烧瓶中,然后再
2014年07月08日发布人:jiushi
-
[size=2][color=Black]
各位战友:我要检测的是18KD的蛋白,遇到如下问题想请教一下
1.溴芬蓝和目的条带位置相近怎么弄啊?
2.跑胶的时候,浓缩胶没有将溴芬蓝浓缩成一条线,大约要指宽,是如何回事?我5%浓缩胶
2014年03月05日发布人:qianqin1977