-
[size=2][color=Black]大家可以自己尝试,8M的尿素你扔到-18度的冰箱里面看看会有什么结果就行了。[/color][/size],[size=2][color=Black]8M尿素冻结析出的照片,[/color][/size],[size=2][color=Black]低温,安静
2013年08月03日发布人:NBA
-
[size=2][color=Black][font=Verdana]本人表达带六个his的一个蛋白的片断,计算理论分子量是20kDa左右。用NI柱纯化并优化纯化条件,发现主要有约20kDa、约40kDa、约80kDa三条带。后来
2014年06月05日发布人:damingxia0904
-
[size=2][color=Black][font=黑体]小弟提蛋白的时候裂解液加少了,结果刮下蛋白后非常黏稠,有点像鼻涕了:(超声6次后离心14000g 6min,根本没有看见沉淀,就是黏稠一团,吸都吸不开。
请问我这个蛋白还能够做
2014年04月13日发布人:dmg
-
[size=2][color=Black]
小弟用pET表达了带有his-tag的融合蛋白,然后用novagen公司的His-Bind kit纯化蛋白,200ul镍柱,35ml细菌培养物,采用离心法。SDS-PAGE(上样量15ul)图
2014年07月04日发布人:wu11998866
-
,目的蛋白是用pet表达的,后带有his标签,应该是包含体形式。以前也做过其他重组菌株的,并不会这样啊,请教各位帮忙想个办法,怎样才能很好的破碎啊。[/size][/color],[size=2][color=Black]避免气泡的产生,我
2014年05月26日发布人:麦茶tea
-
[size=2]
请问一下细胞不同部位蛋白的提取方法,最近看了一些文献,比如细胞的总蛋白,膜表面蛋白,胞浆蛋白,胞核蛋白,似乎都有不同的提取方法,不知道有没有高手可以告知具体的步骤和大致的原理,非常感谢了。[/size],[size=2
2015年08月10日发布人:shkudo
-
还是不能结合上去,透析的目的蛋白也不见了
我自己分析一下原因,可能有几个1,his tag树脂不行,我用重生柱的,按照说明书进行(不知道大家用的是什么样的流程重生,我的是先用离子化缓冲液过柱,bindbuffer平衡后就加液体,采取了连续流过的方法,一次性过几十毫升);2,上清中盐离子浓度太高,初步算了一下,达到0.4mol的
2014年06月17日发布人:079777chao
-
binding buffer和elution buffer梯度浓度了,结果没有改善。 我采用的是康为世纪的Ni-Agarose His标签蛋白纯化试剂盒,请帮忙分析原因,以及接下来如何优化?谢谢!!!!![/b][/color][/size
2013年06月03日发布人:KGZ564
-
[size=2][color=Black][b]
后基因组时代,科学家们已将研究重点由基因组学研究转向功能蛋白质组学研究,而蛋白质与其它生物大分子如其它蛋白质、核酸及多糖之间的相互作用研究则是蛋白质组学研究的关键部分。多肽阵列技术是目前
2013年11月08日发布人:ququer787
-
[size=2][color=Black]
我已经成功在在我的目标蛋白的基因后连接了his尾巴,可是今天做亲和层析实验,发现我的蛋白全部从流过峰里面流出来了,洗脱峰中检测不到我要的蛋白?
我的蛋白是个六具体,我在c端加的尾巴, 我猜想
2014年06月10日发布人:bananapeople