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[size=2][color=Black]这是一个我思考了很长一段时间的问题。我现在也就是一个老菜鸟,什么都知道一点,但是了解得都不深。按照我现在的理解,蛋白质组学研究最重要的意义,就是可以看出不同状态下细胞蛋白质组的变化。比如在正常生理
2013年06月03日发布人:veiwu
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现在在做一个抗生素类的片剂,规格250mg,现在的问题是溶出度无法达标,溶出介质为37℃水,按照美国药典考察内容,溶出考察时间点分别为5min,10min,20min,30min,45min。前段时间确定了一个处方,主药占75%,其余为辅
2014年06月13日发布人:大学习
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我要配制0.02%EDTA+0.125胰酶,但是EDTA在PBS溶液里却不溶,是PH值的问题?[/color][/size],好像要用NaOH调PH为8,[size=2][color
2012年03月10日发布人:yueban-1147
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[color=Black][size=4][font=楷体_GB2312]甲基化检测方法(亚硫酸氢盐修饰后测序法) [转自 丁香园论坛]
甲基化是目前的研究热点,就我所做的一点工作并其中一点心得,与大家分享。希望能够对大家
2011年09月02日发布人:finger
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=Black]
胰蛋白酶很好弄的,又便宜。再称250毫克溶解到100毫升PBS就是了。[/color][/size],[size=2][color=Black]一份1%的胰蛋白酶加pbs液稀释4倍就是0。25%[/color][/size
2012年11月03日发布人:junjie05
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些试试
4、压片压力,直压片压力影响比较大,玉米淀粉的量减少,因为交联聚维酮和玉米淀粉均具有崩解作用,少加交联,加大片硬度,谢谢。淀粉有崩解的作用吧,加多了会不会加速崩解从而加快溶出?,谢谢。淀粉多的话崩解会加快的吧?交联聚维酮是崩解剂,加多了也
2014年05月31日发布人:红旗渠
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第一次做鼠尾胶原,不知是否正确,请前辈们指点!
剥掉鼠尾皮肤,能够很完整地分离出一光滑棒状物,外面是亮白色的长丝状纤维,间或有少许红色的组织;而里芯质地很硬,好像是骨头
2012年04月13日发布人:wood533
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影响不大,仅影响制粒效果。
2、处方不能增加别的组份,但是比例可调,但是三者的比例做过各种极限比例,如5:1:1, 1:5:1, 1:1:5但实验数据显示,其对溶出度影响并不明显。
3、PVP采用的内加,同时也采用过外加,但是对其溶度影响也不大。
4、制粒时间从2min到8min,其颗粒大小有变化,但是其溶出度
2014年02月07日发布人:nsdm
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请问各位群友一个问题:我用胶原酶消化组织后,所得到的液体非常粘稠,用1000转的速度10min无法将组织碎片沉淀下来,即使有部分沉淀,吸上清的时候,由于粘液太稠,因此又将底下部分带了上来
2012年08月13日发布人:skytree
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[size=3][font=黑体]如图[/font][/size],[size=2]没有了,这个我们以前也有过了,这个长条的可能是棉碎了,没有多大的问题[/size],[size=2]染菌了,重做吧![/size],[size=2
2015年01月29日发布人:prettygirl@