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[size=2]请问PE GC-MS 600 仪器 自动调机完成后LEN1 SETTING 为8, LEN2则为125 , 跟以前的10和70 相差太远了, 走标样都走不了(走样时说跟标准情况70差太多))是什么原因吗? 各位有遇到过
2014年11月15日发布人:梦幻苹果
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在一窝蜂的进行蛋白质组研究的时代,大家的技术手段还停留在2D找差异的阶段,新的技术那么多,2D的弊端又是显而易见的,并且就目前文章发表情况来看,这样的东西很难上台面的,看看
2014年03月05日发布人:windboy
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如题
我做得是橡胶胶乳蛋白
1 主动水化 14hrs
2 100V 30' 缓慢
3 250V 30' 缓慢
4 500V 30’缓慢
5 1000V 30' 缓慢
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2013年08月31日发布人:没良心55
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,那不就容易污染了.不知道THP-1细胞对CO2的依赖性有多大,我如果把瓶口拧紧会影响细胞吗?大家帮忙啊.[/b][/color][/size],[size=2][color=Black]
和其他细胞一样,要把瓶口悬松。建议看看《细胞培养实验
2012年05月28日发布人:xue258
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[size=2][color=Black]请教各位大侠:我最近在做P44/42-ERK,分子量如此接近,怎样才能把两条目的条带分开?分离胶的浓度如何?我用的是湿转,电泳,转膜条件应该怎样?非常感谢![/color][/size
2013年11月24日发布人:viviwang1987
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小弟我第一次跑2D电泳,结果见图[/size][/color],[size=2][color=Black]
蛋白上样量:约900ug,考染。
IPG条:Pharmacia公司的18cm
2014年03月19日发布人:damingxia0904
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离子源上有2个灯丝,当我们选择了灯丝1,灯丝2仅是备用吗?有没有其他作用?欢迎大家积极参与讨论。,据说两个灯丝替换使用可以延长使用寿命? 靠谱么?o(∩_∩)o...,这是一点,在灯丝1工作的时候,灯丝2有没有存在的意义?,也可以这样讲
2009年08月24日发布人:licc
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[size=2][color=Black][b]
养了两次这种细胞,都失败了,而且模式基本相同,传完第一次代后分部位生长,有的地方挤得很满,有的地方很稀不长(每次都认真混匀了呀),原瓶传完后就很少贴壁更稀了,然后就逐渐死了。是我的
2012年04月29日发布人:misswu61
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[size=2][color=Black][font=黑体]最近相继自己审核或帮老板审核几篇蛋白质组学论文, 如果是基于SELDI或2DE技术的profiling, 审稿意见基本是拒绝发表, 无论IF多么低的杂志。当然不是所有审稿人的观点
2013年10月17日发布人:txwuyan
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],[size=2][color=Black]卷边和漂都是正常的,但第二天就全起来就不太对了,另外,你的药物都不是细胞培养级的,建议用sigma
2012年04月24日发布人:bongte