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出的峰太多了,也搞不清哪个峰是什么物质,有没有人做过相关的分析啊?,你也可以参考美国职业卫生局的关于此物质的防护材料的资料。,你可以加个标准样品,如果那个峰面积多了则就是这个物质,你分别进二乙苯和二乙烯基苯的标样,就能定峰的位置了,进了标
2013年05月10日发布人:巅峰时刻#-#
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氯化亚砜。是否可以考虑将酰氯转化为甲酯,然后HNMR,酰氯化不完全的话我的纤维上应该会残留有羧基基团,是否会和甲醇反应呢?还有为什么用HNMR呢?愚钝中...,就是你应该提前将酰氯除去再用硝酸银沉淀氯离子,溶剂甲醇,三乙胺缚酸的情况下只会将酰
2014年06月06日发布人:艰苦奋斗
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参考别人的方法,看到有的流动相加醋酸铵,有的加三乙胺,还有的加三乙醇胺,我想知道这三种物质应用于液相色谱流动相中有什么区别?目的都是为了减少拖尾,使峰形更加漂亮吗?这三种物质中那一种最好?评价标准是毒性小,对柱子损伤小并且效果好,以后两者
2011年07月23日发布人:daixuanmn
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液相测苯酚时流动相用甲醇:水=4:1(反相柱)。
2,4-二苯磺酰基苯酚酸性比苯酚要强,如果出峰有拖尾可以在流动相中加些酸(如0.1% 甲酸 或 1%乙酸);最好用待测物的最大吸收波长,如果要求不高也可大概设为270或280nm。
可以先试试下面的一般条件,然后
2011年02月28日发布人:yinuo777
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[size=2][color=Black]请教各位战友:PMA诱导THP-1细胞分化时是用无血清培养基还是含血清的呢?
我初步的试验培养基是含10%血清的,加PMA后细胞到是很快贴壁了,但是形态还是圆圆的,没有伪足伸出来,这样是巨噬细胞
2013年11月19日发布人:mysmdbl
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谷氨酰胺在细胞代谢过程中起重要作用,合成培养基中都要添加,由于谷氨酰胺在溶液中很不稳定容易降解,4℃下放置7天即可分解约50%,所以都是在使用前添加
配制好的培养液(含谷氨酰胺)在4℃放置2周以上时,要重新加入原来量的谷氨酰胺,故需
2012年02月04日发布人:ritou1985
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[size=3][color=Black][b]
我使用的是1640,加入培养瓶后很快变色,一天后就变的很黄,请问什么原因?[/b][/color][/size],[size=2][color=Black]原因:
1. 细胞密度
2012年05月12日发布人:987789
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我用二氯作溶剂,2d DMF,草酰氯(1.2)和丙酸(1),23度反应5h,反应完后常压蒸馏70多度就蒸干了(丙酰氯的沸点80左右)瓶底有固体出现。
然后我把蒸出来的馏分在25度下旋蒸浓缩一会儿~~~怎么把他弄纯啊,里面肯定还有残余的草
2014年03月09日发布人:happydream
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在甲醇当中,在室温下向这个体系通入HCl气体,反应1-2小时,后得到对氨基苯甲酸甲酯盐酸盐,浓缩后,底物悬浮在EA中,可以用三乙胺或者NaHCO3 溶液调节PH得到游离态的对氨基苯甲酸甲酯。,将氨基成盐,不知道能不能避免酰胺化,可以用浓硫酸
2014年03月01日发布人:艰苦奋斗
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但今年开学一连复苏了3管细胞,均是分化前一切OK,分化第一天细胞状态也都正常,但到第2天,细胞就开始出现飘的多,飘细胞内出现浓缩颗粒,类似凋亡细胞,接下来就慢慢的飘的更多了,基本不分。
给看一张第一天的细胞,形态都很正常。细胞变圆,两头
2015年10月15日发布人:雪花子