-
洗涤。
很容易就把细胞都洗没了,请大家帮帮我~~~~~~![/font][/color][/size],[size=2][color=Black]
整个过程要避光? 没那么恐怖! 建议拿个锡铂纸包着离心管。
悬浮细胞一样能做,最后离心
2012年05月31日发布人:雪山飞鹿
-
[size=3][color=Black][b]
请教大虾们一个问题:
本人的细胞在离心的时候最近出现了问题,一般离心后我们的细胞会沉积在管底,现在我的细胞离心后,沉积在管壁,形成一条线直到离心管底,请问这是为什么
2012年03月20日发布人:minran_1980
-
转入1.5ml离心管中4°C离心,1500转15min
3.用1000枪将上清转入差速离心专用离心管中(离心管事先用去离子水冲洗)用裂解液配平
4.差速离心33000-35000转(45000g)30min
5.弃上清,沉淀加入150
2013年05月07日发布人:vtongli
-
PCR后的DNA的具体的保存方法(如:溶剂,温度等)和保存时间,谢谢!![/size],[size=2]RNA: 可以放在1.5的eppendorf管中加1ml75%乙醇,-80度保存。大约可保存一年。
CDNA,DNA:这俩者的保存方法一样
2015年12月01日发布人:H2O
-
[size=2][color=Black]
我现在在摸索细胞冻存技术,有一些细节想请教大家.我的步骤是这样的 : (1) 用胰酶消化,并加培养液制成细胞悬液
(2) 收集细胞悬液于离心管,1000rpm ,离心10分钟.
(3
2012年07月21日发布人:leifengta
-
现在在萃取,石油醚萃取就出现了乳化层,本以为用乙酸乙酯萃取会破乳,结果没有作用,我已试过加热(含有的化合物对热不稳定,所以温度设在40度)和加入氯化钠,但好像没有作用,还请各位高人指点啊~不胜感激!,最有效的方法,是把乳化层放入离心管中
2010年08月28日发布人:JJSIE--NNE
-
培养液,加入新的培养液即可;
2、只弃去部分培养液,瓶中保留少量的液体,再加入新鲜培养液;
3、先将细胞吹打起来,使所有细胞悬浮,收集细胞于离心管,800rpm,10min,弃去培养液,用新鲜培养液重悬。
4、将细胞瓶竖直放置,使悬浮
2012年03月12日发布人:@STAR@
-
6ml将血液稀释一倍
3、无菌条件下取淋巴细胞分离液14ml于玻璃离心管中
4、用尖吸管分别向对应玻璃离心管中加入稀释血液各12ml,未冲破淋巴细胞分离液的液面。
5、水平式离心机离心,2000rpm,20min.
6、用尖吸管轻轻插入
2012年07月25日发布人:zranqi_1
-
的细胞培养面,呈白色。再多放几天,呈现白色絮状,呈悬浮状。
我们的培养瓶,离心管用之后都是放酸缸里泡过夜的,并在清洗后放于双蒸水中泡过夜的。用之前在高压蒸汽灭菌并烘干后使用。超净台使用之前照紫外30min ,培养基瓶子在打开前都放在火上
2012年01月17日发布人:yhz1973
-
(protocol)
从300μl全血中分离DNA
时间:45分钟
预期产量:5-15μg DNA
细胞裂解
1. 将300μl全血(或骨髓)加入盛有900μl红细胞裂解液的1.5ml的微型离心管中。翻转使其充分混合,在室温下
2013年04月02日发布人:荒漠孤驴