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有利于酯化反应,回流状态下,反应温度始终保持在甲醇沸点70度左右,反应速度比较慢。,不会吧?应该搅拌一下就可以了。 0.4M,取1.28gKOH,稀释到100ml甲醇中。,一般是用0.4M氢氧化钾-甲醇溶液, 不用氢氧化钠,氢氧化钠难溶
2010年04月27日发布人:smile1013
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度,而且要考虑吸光度在这一波长附近的变化率。变化率大显然是不合适的,因为只要检测器有1个纳米的波动,吸光值就改变很多,重复性自然不好!要把峰变细(提高柱效)可以考虑梯度洗脱。,乙腈在196的吸收很大的啊
噪音大很正常,一般都是选择大于220的波长,甲醇和乙腈作流动相时,
2009年07月07日发布人:感悟人生
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平衡柱压 柱压波动
比如我用52%乙腈平衡柱压时,先上升到160多 逐渐下降至150bar 能稳定2min多 然后又开始上升几个bar 然后又下降 稳定几分钟后 又上升再下降再稳定 如此
怎么回事?,单向阀不是很好用,有东西从色谱
2012年01月05日发布人:ligang8974
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,流动相是乙腈/水。但是乙腈太贵了,假如换做甲醇可以吗?会有什么影响?,你这个是要要求是什么?是否要求按照国标走?如果严格按国标走的话是不能换的,没有做实验,不能保证换成甲醇后会有什么样的影响,因为甲醇和乙腈的选择性不一样。,同意楼上的,如果你
2010年11月09日发布人:DragonsABC
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[size=2][font=黑体]用缓冲盐流动相做完分析后,用纯水冲洗好还是用5%的甲醇水溶液冲洗好? 谢谢![/font][/size],都可以。5%甲醇水只是为了防霉,[size=2]纯水对柱子不好,一般建议5-10%的甲醇与水
2014年10月21日发布人:ujne
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色谱柱为啥要保存在甲醇里,好像乙腈也可以,为啥不是其他的呢?,for your imformation
[b]液相色谱柱的保存[/b]
1.反相色谱柱每天实验后的保养:
使用缓冲液或含盐的流动相,实验完成后应用10%的甲醇
2010年01月01日发布人:luomuwuhen
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配制1mg/ml的胶原酶溶液是用pbs来配,还是用三蒸水配制,是否可用培养液来配啊[/size],[size=2]应该用PBS或Hanks来配,胶原酶发挥作用需要离子强度和合适PH值,光用三蒸水配不利于酶的活性,培养液
2015年08月11日发布人:子衿青青
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现在的方法是用乙腈沉淀蛋白,但是乙腈中加入0.25%的三氯乙酸,请问这样子处理之后的血浆样品还可以进质谱么?不知道三氯乙酸的挥发性怎么样。。,要不要再经过浓缩?以前做过加三氟乙酸的,在浓缩干燥时三氟乙酸会挥发掉,温度是室温,对质谱不会产生
2010年01月26日发布人:kidpk
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[size=4][求助]硫酸氯吡格雷的稳定性和保存方法
刚刚拿到硫酸氯吡格雷的课题,稳定性还没开始做,请教下做过这个项目的前辈们氯吡格雷的稳定性怎么样?保存的时候要注意什么?谢谢~
P.S 仿制剂型用的是晶型1,不是原研
2011年11月02日发布人:小糖块
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各位大虾,小弟试验室前俩天有人用80%的乙腈做流动相,C18柱,杯具是用蒸馏水配得,更杯具是还没有过滤,有保护柱,现在我用发现峰面积减小很多,出峰时间差不多,压力也没有明显变化,但峰面积减小特多,恳请各位赐教啊。,这个跟水没关系吧,看看
2012年01月04日发布人:JJSIE--NNE