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[size=2][color=Black]最近在纯化一个大肠杆菌表达的重组蛋白,抽提包涵体的过程:20 mM Tris-HCl,0.5MUrea , 0.5M NaCl,2% Triton X-100,100ug/ml溶菌酶,pH 7.5
2013年12月16日发布人:Darcy
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本人做PCR已经有一个月,有一次跑的电泳图最漂亮,目的基因和内参条带均很亮,二聚体基本没有。后来一直按照这个条件跑,但每次目的基因条带颜色都很淡,而二聚体很亮。尝试过增加模板DAN的量,效果不明显和不知应该如何调整
2016年03月03日发布人:caihong
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[size=2][color=Black]各位好:
请问包涵体如何复性?请教:包涵体的复性
我原核表达了一个蛋白,发现是以包涵体形式存在。用盐酸胍变性溶解镍柱纯化后。
上次我用0。5mol/L Tris, pH7.9;10%的
2013年06月04日发布人:ilovegaga
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[size=4][color=Black][b][求助]有谁用过TAKARA的100bpDNA LADDER MARKER?
有谁用过TAKARA的100bpDNA LADDER MARKER?我的PCR产物电泳时挺清楚,为何
2011年10月12日发布人:bohe221
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各位前辈大侠们:
我想请教一下,我现在做关于细胞氧化还原的实验,看的文献中关于“细胞处理”的时候,提到了超声处理与0.1% Triton X-100,我想询问这两种应如何应用?先声处理还是先
2014年03月20日发布人:caihong
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[size=2][color=Black][font=黑体]最近在做包涵体的复性与纯化,采用的是柱上复性的方法,可以得 到的蛋白沉淀了,请问柱上复性要注意些什么哟,出现沉淀后怎么办?[/font][/color][/size],[size
2013年06月08日发布人:youreyes
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不用100%的磷酸水又不能分开两个峰!!这怎么办啊!!急需高人解救,现在市场上有很多耐水的反相柱,既然能分开,说明你的柱子也能耐水,否则柱子早坏掉了。你用的哪个厂家的哪种型号的柱子i?,有损害!纯水相肯定是不可取的!
试试什么对这两个峰
2011年05月16日发布人:会飞的鸽子
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我们学校做电镜镀金的时候温度要到达80-100℃,请问会破坏我的水凝胶的结构吗?,文献中有大量这样的报道,有没有破坏结构没有人能够说清楚。,应该会有影响,最好先将其冻干,然后再喷金,就是普通的镀金温度没那么高吧,你再确认一下,如果真的那么
2015年07月15日发布人:小妖精@
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[size=3][font=仿宋_GB2312][讨论帖]手性异构体的分析方法验证(专属性试验)
按照[H]GPH8-1 手性药物质量控制研究技术指导原则的分析方法的验证:方法的验证应参照分析方法验证的技术指导原则,对于光学纯度
2011年11月24日发布人:bluelake
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[size=2][color=Black]请教各位大侠,我诱导了200ml菌液,加入多种酶、破菌后,低浓度尿素洗涤,用8M尿素溶解包涵体,完全悬浮沉淀后,液体呈淡红褐色,4度过夜,离心后仍有很多沉淀。这沉淀吹打时有些粘稠,红褐色。电泳结果
2014年02月20日发布人:49888