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的时候是包被20分钟以上,吸弃残液就可以用了!培养瓶应该是一样的。
最好不要高压吧,0.22μ的滤膜过滤不也挺好的吗?[/size],[size=2][color=Black]
明胶溶液配好了以后,不能高压!因为高压后,明胶变性
2012年10月31日发布人:cocacola
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细胞时都用一个吸管,否则你的瓶子盖的严严的,想钻也进不去啊,我有一瓶子都裂缝了,但细胞好好的什么事也没有。其实最需要注意的是无菌操作[/color][/size],[size=2][color
2012年10月27日发布人:羊咩咩
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=Black]
我通常用恒压,100v, 60 min,效果还可以。
转膜缓冲液最好用新配制的,加上预染MARKER吧,可以监测一下转膜的情况,具体操作大家的可能差不多,多注意一下细节问题就是了,比如说在作“三明治”的时候注意一下速度,冰块降温,根据蛋白的大小和实验室的具体情况选择不同的膜等等。
在刚开始作WB的时候摸条件是
2013年10月10日发布人:鹿奔奔
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[size=2][color=Black][font=黑体]
PVDF转膜用丽春红染色后,条带不能立即显示,大概等10分钟后,条带很浅,但是等膜干了后条带全没有了。我的转膜条件是100V,60分钟。
请问我的问题出哪了?转膜时间短
2014年01月25日发布人:txwuyan
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实验室打算添置一些滴瓶,书上说有30,60,125毫升的,请问大家,在60到125之间的滴瓶还有吗?我感觉60偏小,125又偏大,呵呵,60ml的比较小 一般来说125ml的还可以 不算大 实验室基本上都用这两种的,朋友,问问销售吧。有
2010年11月09日发布人:YJLL09
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[size=2][color=Black][b]
实验室买了一些一次性的培养瓶,感觉很好用,可是用完以后丢了感觉挺可惜的,想处理一下再用,干热不行,湿热也不行。
用酒精浸泡后能符合要求吗?战友们还有什么好方法吗?[/b
2012年07月31日发布人:tangxin_80
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[size=3][求助]抽滤瓶和抽滤头分不开了,怎么办?
我用的抽滤装置是最常见的那种,上面一个杯子,中间是抽滤头,下面是锥形磨砂口瓶,我抽滤前没有擦干磨砂口,抽滤完后,抽滤头和抽滤瓶分不开了,望各位高手多多指点~~~提前谢谢
2011年11月21日发布人:superboy
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系里面买了一个日立s4800的场发射扫描电镜,按说此仪器很好,能够放到到10万倍应该没有问题。实际情况在放大2万倍左右很方便的拍出图片,可是一旦到5万倍图片就模糊不清楚,10万倍更是拍出图片不能用。在每次聚焦时候图形乱晃动,好像是聚焦不好
2015年01月16日发布人:哈达
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我们培养细胞时用塑料瓶来培养,但是那位朋友知道塑料瓶怎么灭菌才能做到彻底灭菌呢? [/size],[size=2]
培养细胞时用塑料瓶应该是一次性的。
我们平时使用不存在灭菌的问题[/size],[size=2
2014年09月02日发布人:bohe221
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?[/size],[size=2]可以看下这个帖子。
[url]http://www.instrument.com.cn/bbs/shtml/20080717/1359375/[/url][/size],[size=2]一般用洗衣粉液浸泡洗刷
2015年09月22日发布人:pore