-
尿素,20 Tris-Hcl;
250mM NaCl,2M 尿素,20mM Tris-Hcl;
125mM NaCl,1M 尿素,20mM Tris-Hcl ;
20mM Tris-Hcl 在4摄氏度条件下各透析6个小时, PH值分别
2013年12月07日发布人:11_hjx
-
,这个现象也不是每次都有 就是感觉时不时的发生,所以很是费解~[/color][/size],[size=2][color=Black]
请问楼主的问题解决了吗?换个loading buffer试试?[/color][/size
2013年05月25日发布人:张先生
-
],[size=2][color=Black]
这个有很多原因哈!
1、确定表达是你的蛋白
2、破碎情况
3、buffer 的PH值 这个很重要
4、binding buffer、Washing buffer、 Elution buffer
2013年12月28日发布人:langlang
-
)上说这两个酶不能同时切(BamHⅠ有专门的buffer)。于是我做了两步切,每步胶回收,但DNA损失殆尽,连接时没接上。
我很是头疼,该怎么办? [/b][/font][/color][/size],[size=3][color
2011年10月07日发布人:mamamiya
-
,125A 300*3.9mm。我把在线过滤器超声清洗后,压力依然在4000psi以上,柱子的筛板也卸下来清洗了,可压力依然不变。只有升高柱温到60度时,压力才在3500psi左右,但方法是美国药典收载的我们不能改变方法,各位大虾,你们还有什么
2011年05月28日发布人:dxkuii
-
binding buffer和elution buffer梯度浓度了,结果没有改善。 我采用的是康为世纪的Ni-Agarose His标签蛋白纯化试剂盒,请帮忙分析原因,以及接下来如何优化?谢谢!!!!![/b][/color][/size
2013年06月03日发布人:KGZ564
-
GSS-4 393 370±16
GSS-5 125 118±7
GSS-6 81.6 75±6
GSS-7 452 410±23
GSS-8 76.3 68
2014年09月06日发布人:jiushi
-
讨论讨论,
先看一个图
这是刚电泳不久的图片,大概6,7min的时候,
我们看到溴芬兰条带压的挺整齐的,
但是第一个marker孔还是弥散,
样品是用TCA沉淀的,溶解的buffer主要成分是:8M urea, 10mM
2013年07月27日发布人:=pkchen=
-
[size=2][color=Black][font=Arial]
我要纯化一个带His标签的蛋白,但是无论如何都纯化不出来。我用的是Qiagen的Ni柱纯化的,用的是非变性的方法,试剂配制如下:
lysis buffer: 50mM
2014年02月12日发布人:水母
-
描电镜拍的照片不一样啊?怎么办,我喜欢把标尺也扫进去,这样加标尺比较方便,而且我一般都是在word里加。
如果没有标尺,可以按照下面的关系来换算。1nm放大1000万倍就是1cm,比如图像的放大倍数是8万倍,图像上1cm就是125
2010年12月27日发布人:goodgood