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[size=2][color=Black][font=黑体]小弟提蛋白的时候裂解液加少了,结果刮下蛋白后非常黏稠,有点像鼻涕了:(超声6次后离心14000g 6min,根本没有看见沉淀,就是黏稠一团,吸都吸不开。
请问我这个蛋白还能够做
2014年04月13日发布人:dmg
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咪唑
用Western blot检测后发现上清液(SN)和第一次过柱后的流出液(L1)均有his蛋白的表达(原则上L1应该没有his蛋白的),与预期目的蛋白大小一致,但是结果中的洗脱液就没有目标蛋白了。
我还尝试用变性的方法来纯化蛋白
2014年02月12日发布人:水母
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[size=2][color=Black][b]
请各位大虾赐教sds-page胶中蛋白回收的方法。[/b][/color][/size],[quote]原帖由 [i]pencil菲[/i] 于 2013-5-2 16:46 发表
2013年05月02日发布人:pencil菲
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[size=2][color=Black]我们知道Cys存在与许多蛋白中,且其中的-SH常作为活性中心发挥作用,或者,两个-SH连接成二硫键,是维持蛋白质高级构象重要桥梁。
-SH具有很强的还原性,溶液被溶液中的溶解氧或其它氧化物氧化
2013年08月14日发布人:tudou85
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[size=2]
我养的是MCF-7细胞,接种于96孔板上,溶剂对照为DMSO,我是这样加药的:
用DMSO稀释药物到各浓度,然后每孔加198微升培养液,再加2微升DMSO稀释的各浓度药物,作用3天后,发现细胞基本上全死调了,难道是1
2015年10月15日发布人:米西11米西
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26KD
2, 这个低分子杂带的大小随目的蛋白的大小成正比,也就是说有可能和目的蛋白有关
这个低分子杂蛋白被纯化出来有2种可能模式
1, 被NI柱纯化出来,可能带HIS(不一定是6HIS有可能是4HIS,5HIS
2013年11月09日发布人:purrr
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看了许多帖子,大家大多是谈的实验操作问题,很少涉及大生产的问题,不像其他板块。其实目前蛋白质大生产前景看好,许多蛋白质表现出很好的生理药理活性,如何使这些蛋白质转化为生产力,为社会,为大家,为
2014年04月19日发布人:yapuyapu
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[size=2][color=Black][font=Impact]
在蛋白质组学研究中,如果使用高通量方法会得到大量蛋白质数据, 这就需要采用生物信息学的方法进行处理. 这里介绍一篇文章,希望能起到抛砖引玉的作用, 让大家讨论一下还可
2013年10月11日发布人:草木叉
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我在做180KD的VEGFR1/VEGFR2的wb,做了快2个月了,从来没有目的条带出来,急死了.
用考马斯亮蓝染色时目的条带也不清楚,请问我需要增加上样量吗?我现在上样的总蛋白量是
2013年05月21日发布人:flyxx05
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请问各位网友,我提的细胞膜蛋白,已经冻干了,打算做WESTERN,用什么来溶解才能保证蛋白不降解呀?[/color][/size],[size=2][color=Black]
很简单,用1
2014年02月05日发布人:idoww