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后基因组时代,科学家们已将研究重点由基因组学研究转向功能蛋白质组学研究,而蛋白质与其它生物大分子如其它蛋白质、核酸及多糖之间的相互作用研究则是蛋白质组学研究的关键部分。多肽阵列技术是目前
2013年11月08日发布人:ququer787
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我养的是MCF-7细胞,接种于96孔板上,溶剂对照为DMSO,我是这样加药的:
用DMSO稀释药物到各浓度,然后每孔加198微升培养液,再加2微升DMSO稀释的各浓度药物,作用3天后,发现细胞基本上全死调了,难道是1
2015年10月15日发布人:米西11米西
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26KD
2, 这个低分子杂带的大小随目的蛋白的大小成正比,也就是说有可能和目的蛋白有关
这个低分子杂蛋白被纯化出来有2种可能模式
1, 被NI柱纯化出来,可能带HIS(不一定是6HIS有可能是4HIS,5HIS
2013年11月09日发布人:purrr
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看了许多帖子,大家大多是谈的实验操作问题,很少涉及大生产的问题,不像其他板块。其实目前蛋白质大生产前景看好,许多蛋白质表现出很好的生理药理活性,如何使这些蛋白质转化为生产力,为社会,为大家,为
2014年04月19日发布人:yapuyapu
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在蛋白质组学研究中,如果使用高通量方法会得到大量蛋白质数据, 这就需要采用生物信息学的方法进行处理. 这里介绍一篇文章,希望能起到抛砖引玉的作用, 让大家讨论一下还可
2013年10月11日发布人:草木叉
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我在做180KD的VEGFR1/VEGFR2的wb,做了快2个月了,从来没有目的条带出来,急死了.
用考马斯亮蓝染色时目的条带也不清楚,请问我需要增加上样量吗?我现在上样的总蛋白量是
2013年05月21日发布人:flyxx05
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前日,去维修一台紫外,用户测的是DNA样品;由于样品稀少和昂贵,故,样品池采用了 10 x 2mm的微量石英池,同时参比池也采用了一样的池子。我对用户说,参比池可以使用普通的10 x 10mm的石英池。但是他们不同意我的说法,坚持说,我的方法会影响测试结果的。请大家说一说,我的做法可以行得通吗
2011年07月24日发布人:zhuifeng269600
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请问各位网友,我提的细胞膜蛋白,已经冻干了,打算做WESTERN,用什么来溶解才能保证蛋白不降解呀?[/color][/size],[size=2][color=Black]
很简单,用1
2014年02月05日发布人:idoww
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,成本还要低廉;经过提拉生长的溴化钾单晶体是最佳的红外传递窗口,价廉物美;晒晒你见过的溴化钾窗片的各种规格尺寸,并简评一下它的用途要求![/size],[size=2]这个东西都是可以订制的吧,主要就是因为便宜才能成为市场主流 [/size
2015年01月31日发布人:remenb
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都不没有。当然可能其他方面都可能存在问题:1.目的蛋白的上样量如何?(磷酸化蛋白容易脱磷酸化,所以提取蛋白时很重要,而且本身磷酸化蛋白的丰度就低);2抗体的浓度可能要高;3显色可能要敏感;4洗膜时间要短点,次数少点,且摇的力度要小点
2014年05月12日发布人:wanglaoshi