-
[size=2][color=Black]
请教大家一下
我在做BCL-2和BAX的WB
分子量分别是26和20KD
MARKER是11KD~230KD的
问题是目的条带和前缘的溴芬蓝离的太近,几乎跑到尽头也分不开多少?这是
2014年02月20日发布人:jrwyyplt
-
才刚刚进入分离胶,继续电泳4h溴芬兰才到分离胶中间的位置)
2. 溴芬兰进入分离胶后约2h开始变黄
看了以前的帖子,分析原因可能是电泳缓冲液、凝胶缓冲液和上样缓冲液的pH不对,所以全部重新配的,而且全部一次性,没有重复利用,电泳时正负极
2014年03月27日发布人:duoduo
-
,
数据处理系统:varian 气相色谱工作站
这是19种有机磷的色谱图,它们辛硫磷、敌敌畏、丙溴磷、甲胺磷、乙酰甲胺磷、甲拌磷、二嗪农、乐果、毒死蜱、甲基对硫磷、马拉硫磷、杀螟硫磷、对硫磷、甲基异柳磷、水胺硫磷、三唑磷、亚胺硫磷、伏杀硫磷等。[/size],[size=2]DB-1701柱上19种农药
2014年10月23日发布人:雪原
-
做实验一年了,始终没过click这一步,就是用末端炔与叠氮合成1,2,3-三唑,催化剂是五水硫酸铜和抗坏血酸钠,溶剂是DMSO或THF。点板的时候反应液中原料点都不见了,但就是不见有新的点,有时有也很浅,还拖尾,紫外灯、硫酸烤、碘熏都试过
2014年02月19日发布人:jiankufanhan
-
我用醇与2-溴异丁酰溴反应,加入三乙胺,用二氯甲烷作溶剂,反应,呈现红色,过滤,用饱和NaHCO3洗完,悬蒸,出现黄色液体,可是文献给的是固体,mp:45,在反应中,我用的溶剂都重蒸过,并且已经确定不是没反应的原料,原因在哪,请大家
2014年06月08日发布人:jiankufanhan
-
[size=2]如题。
物质结构如图所示。
极性非常大,本实验室只有反相柱。
曾采用方法:离子对色谱(无效果);苄基溴衍生(反应慢,杂质多)
望各位xdjm出出主意。
谢谢啦[/size
2015年09月26日发布人:天蝎座
-
,溶于有机溶剂。不知道极性大小,怎么判断?
2.目前用甲醇:水=1:1
2min出峰,不知道是不是所属峰。
3.对其反应后进行产物分析。
在1-2min出现3到4个峰。该如何改善,2min出峰太快,加大水的
2011年03月27日发布人:yinge
-
[size=2]
惨了,我合成了11对引物,大概有400bp,10OD,要1000多,其实不要10OD的,2OD就够了,但是看丁香园有人说价格都是一样,不管是2还是10OD,
现在我这生工代理要2.8元/BP,我该怎么半啊
我以为是
2015年12月04日发布人:969
-
请教各位大侠,在水中加入什么物质(例如无机盐之类的东西),可以让水的冰点提高4-5度,谢谢啦!,加NaCl就可以了啊,盐水温度可以很低的,你到底是要提高还是降低呀?说清楚呀 降低就太简单了,我是要提高4-5℃啊,各位大侠,我是想提高水的
2014年02月21日发布人:jiushi
-
[size=2][color=Black][b][求助]HepG2细胞复苏
最近一直在复苏HepG2,但是细胞24H后几乎不贴壁。反复调整复苏条件,均失败。我的复苏步骤如下:
第一次:准备一支离心管,该离心管已装有
2011年12月30日发布人:caihong