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5.0 57~212
不好分开呢。用预染MARKER[/size][/color],[size=2][color=Black]
建议采用大于15%的分离胶,最好用梯度胶。另外PVDF膜的孔径要选用0.22uM的,不要用0.45uM的
2014年03月17日发布人:idea2011
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[size=2][color=Black]采用的是tricine-SDS-PAGE胶跑电泳,但是省去了中间的space胶,每孔上样量15ug以上,半干转膜时电流采用60mA,1h,PVDF膜(45nm),电转液按照takara目录后的配方
2013年07月27日发布人:any333
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我在做锂硫电池正极时,将升华硫、碳纳米管、PVDF按7:2:1的比例混合,加NMP涂片时,涂出来的极片有明显的条状,且表面有颗粒物,请问可能的原因是什么呢?,涂膜期间有颗粒物,主要是材料本身的粒径过大了,也有可能是浆料的混合不均匀。nmp
2016年04月26日发布人:#断点#
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中甲醇的量,因为它是用来洗脱蛋白上结合的SDS的,而SDS多了很可能就转不上膜.一般甲醇量在15%左右.另外PVDF膜要用甲醇浸透,并且平衡时间一
2014年07月01日发布人:docsy
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,转膜后,我以考染证实了有目的条带,并且PVDF膜上的条速带与胶上一样,但就在加一抗,二抗后,后显色没有信号,实验方案如下:
一、 材料与试剂
1. 样品: 先用肺灌洗液,结果不好,又做了肺组织匀浆,结果也不行。(SDS-PAGE跑肺
2014年06月10日发布人:gogo
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/back.gif[/img][/url]
请各位大虾赐教sds-page胶中蛋白回收的方法。 [/quote]
[size=2][color=Black]PVDF膜转膜![/color][/size],[size=2
2013年05月02日发布人:pencil菲
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[size=2][color=Black][b]
我最近在做自噬相关蛋白LC3western,我配的是15%的胶,PVDF膜:0.22,转膜我分别湿转200MA30分钟,150MA50分钟,干转15V30分钟都试过但是都没有结果,转完膜
2013年05月10日发布人:superboy
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[size=2][color=Black][font=黑体]
蛋白分子量在80-50间。10微升marker(thermo SM0671)上样,胶上marker挺清楚的。。。转膜用bio-Rad 湿转 120min,PVDF膜。。。转膜
2013年05月13日发布人:star#room
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我们现在的蛋白分子量是13.5KD,PVDF膜一定的用0.2um的吗?是不是蛋白能转过去啊?
实验室现在有0.45um的,能不能用哈?
大家多提提建议,呵呵,谢谢了![/color
2014年03月29日发布人:qianqin1977
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呢?我用的是PVDF膜,我没有按照膜的说明书去配液,应该不会有影响吧?[/color][/size],[size=2][color=Black]
那是应该没有转到膜上, 1.是不是转膜时间短了,还有PVDF膜需要处理一下,先用100%甲醇
2014年06月17日发布人:join