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三次,细胞株试验),接下来该怎么思考呢?
蛋白的降解减少了?反馈性的抑制了蛋白的表达?
抑制蛋白降解的途径有哪些呢?蛋白酶体?泛素化?那为什么不是所有蛋白的表达上调?
还是有其他的原因?这种情况该怎么思考了呢?
敬请各位老师指点
2014年02月03日发布人:ns5fan
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膜蛋白,分子量为18KDa,分离胶浓度多少最合适啊!急...,12%就可以的,谢谢回复!
用短胶版试了一下蛋白跑的太快,太靠近前沿,效果不是很好,想看看是不是可以通过改变胶的浓度让它更适合分离这种小分子量的蛋白!,我们跑泛素,10k
2016年04月02日发布人:xiaoxiaojinglin
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][font=宋体][color=black][size=3]三重基序蛋白(TRIM[/size][size=3])是一类结构保守、进化快速的[/size][size=3]E3[/size][size=3]泛素蛋白连接酶,有报道称,[/size][s
2023年07月10日发布人:medicilon
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膜蛋白,分子量为18KDa,分离胶浓度多少最合适啊!急...,12%就可以的 :),用短胶版试了一下蛋白跑的太快,太靠近前沿,效果不是很好,想看看是不是可以通过改变胶的浓度让它更适合分离这种小分子量的蛋白,我们跑泛素,10k,都用15%的
2016年03月23日发布人:大大
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膜蛋白,分子量为18KDa,分离胶浓度多少最合适啊!急...,12%就可以的:) :),用短胶版试了一下蛋白跑的太快,太靠近前沿,效果不是很好,想看看是不是可以通过改变胶的浓度让它更适合分离这种小分子量的蛋白,我们跑泛素,10k,都用15
2015年10月13日发布人:今生如此
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蛋白,我们跑泛素,10k,都用15%的跑呢,电压和时间上控制一下就行了,没问题的,谢谢你的回复,能说一下具体的电压和时间怎么控制吗?我跑蛋白电泳比较少,控制电流一般浓缩胶20mA,分离胶35mA!看别的文献 资料控制电压80V和150V
2016年02月23日发布人:mimima
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,E3,然后泛素化你的目的蛋白,然后上质谱,做差异分析。,质谱分析不是很可靠呀,很多时候质谱都分析不出具体的修饰位点,请问还有其它比较可靠的方法吗?
2015年10月23日发布人:哈密瓜
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膜蛋白,分子量为18KDa,分离胶浓度多少最合适啊!急...,12%就可以的68.GIF,用短胶版试了一下蛋白跑的太快,太靠近前沿,效果不是很好,想看看是不是可以通过改变胶的浓度让它更适合分离这种小分子量的蛋白,我们跑泛素,10k,都用
2016年01月18日发布人:PP熊
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[size=2][color=Black][b]我做过不少磷酸化蛋白的Western blot,之前在免疫学技术讨论版发过贴子:
[url]http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=68&id
2013年05月06日发布人:箭头儿
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明理由,如果可行,请说明技术路线。
2、翻译后修饰(包括糖基化、磷酸化、泛素化等)的蛋白质组学研究中共性核心技术是什么?请简洁设计一个利用该核心技术进行翻译后修饰(糖基化、磷酸化、SUMO化中任意一种)蛋白质组学研究的实验方案。
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2016年03月19日发布人:yayayu