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实验动物中采用的给药方法众多,根据药物性质和实验目的不同,需要采用不同的给药方式,如上一期介绍的灌胃、腹腔、皮下注射及静脉注射给药,在这几种给药方式中尾静脉给药难度最大,却也是我们不可或缺的实验技能。今天,就和大家分享下尾静脉注射的技巧
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其实大鼠尾静脉注射步骤和小鼠基本类似,只是...... 因为大鼠,个体更大,难固定、易挣扎;尾巴颜色深,不易辨别血管;尾巴质地更粗糙,扎针力度要更大; 因此大鼠尾静脉注射操作难度更大。如下图分别为小鼠和大鼠的尾巴,可见大鼠尾巴的质地粗糙
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左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定。在一些非凡的实验中,如进行尾静脉注射时,可使用非凡的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。或者用
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可供选择。可提供适用于大鼠、小鼠、新生鼠的大腿传感器、爪传感器、足部传感器、喉部传感器、颈部传感器、核磁兼容传感器——以适配不同实验场景,如动物处于麻醉、清醒状态,或处于仰卧、俯卧状态,甚至支持核磁条件下的生理参数检测。多种不同类型传感器
2023-11-22
来源: 上海玉研科学仪器有限公司
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,不要急于下一步操作2. 固定进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射等操作时(必要时先行麻醉),需做一定形式的固定。如尾静脉注射或采血时:如下图为小鼠固定器和尾静脉注射。第一步:打开尾盖,手提起小鼠尾巴,让动物头对准鼠筒口并使其本能的爬入固定器内
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仪器设备更新的又一个重要方向。 第三,就是仪器智能化。“智能化”不等于“自动化”,智能化是更高的层级的自动化。智能实验室(或智慧实验室)除了自动化外,在一定程度上还要能够感知实验室人员心理、语言或行为诉求,并且能自动实现这些诉求。国内很多实验
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实验材料小鼠仪器、耗材大培养皿注射器酒精棉实验步骤在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若
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动物实验当中,小鼠给药的方式有多重,常见的有灌胃,腹腔,皮下,尾静脉,饮食等。相比于灌胃、皮下,腹腔等给药方法,尾静脉注射可能是相对有难度的一种给药方式。对于新手来说,尾静脉难以操作成功。但是通过合适的方法,多加练习,也能轻松掌握
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实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 将动物固定或麻醉后,露出鼠尾,将尾巴置于45℃~50℃热水中浸泡数分钟,使血管扩张。擦干鼠尾后,将尾尖剪去1~2mm(小鼠)或5mm(大鼠)。从尾根部向尾尖部按摩,血即从断端流出。
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仪器参数设置具体介绍如下:仪器参数设置主要包括温度设置和电极常数设置。在进行仪器参数设置之前,建议对仪器预热30min 后,并将电极用蒸馏水清洗干净后,再进行设置。电导率与温度具有很大相关性。金属的电导率随着温度的升高而降低,半导体的