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看图后有以下意见:
1 第6道加样时可能是加样器尖部刺穿了胶底部,所以漏了。
2 蛋白样品没有和上样缓冲液充分混合。
3 制胶时,要充分混匀,使得胶的质地均匀。[/color][/size],[size=2][color=Black
2013年08月17日发布人:linlinstar
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][color=Black]看图后有以下意见:
1 第6道加样时可能是加样器尖部刺穿了胶底部,所以漏了。
2 蛋白样品没有和上样缓冲液充分混合。
3 制胶时,要充分混匀,使得胶的质地均匀。[/color][/size],[size=2
2013年12月04日发布人:吉吉0120
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=4][font=黑体]谢谢楼上的兄弟。
我加样的顺序是:
H2O
BUFFER
MgCl
dNTP
primer
Taq 酶
DNA
请问这个顺序对吗?
我加样时确实有过因省事,不想来回转动加样器而打乱顺序的
2011年09月16日发布人:雷子!
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不解。。。。[/color][/size],[size=2][color=Black]
请用25%甘油试试吧[/color][/size],[size=2][color=Black]
如果你的loading buffer 配的没问题,则是操作不够细引起。建议最好用专门的加样器,它可以伸入加样泳道的底部,可最大限度的减少样品
2014年07月08日发布人:superboy
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,这样反应体系比较稳定。[/size],[size=2]
在计算好试剂加入量的情况下,使用25ul的体系可以节省模板和其他试剂.可以做预实验使用摸体系.
前提是:
1.要使用精确的微量加样器.(0.1~2ul)
2.操作标准娴熟
2015年11月10日发布人:IAM007
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[size=2][color=Black][font=Impact]
我们进行Western blot实验近一月,最近在SDS-PAGE 上样的时候发现一个奇怪现象:
我们用20ul的加样器每次吸取10ul,用于上样;但当Tip尖端
2014年04月13日发布人:舞song
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产生的气泡,倾斜比色皿慢慢倒入溶液,不要震动或者摇动,可以减少气泡的产生,去除气泡后,快速测定。
移液过程中注意尽量贴壁,加样时选用不易产生气泡的加样器,加样时贴壁,另外在合理时间内静置,对于易分解的双氧水最好避免强光直射也不要摇
2013年05月22日发布人:apple_danny
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进行诱导分化成成熟脂肪细胞.所以我每次换液总把握不好.请问有谁有这方面的经验吗?在此多谢了.
[/color][/size],[size=2][color=Black]我们实验室一般用机械吸引器吸引,吸引器管前面套一个20ul加样器的
2012年07月25日发布人:owanaka
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],[size=2][color=Black]
我也正需要了解这方面的内容,请问点样至NC膜后,如何干燥和固定好呢?[/color][/size],[size=2][color=Black]
将待检蛋白用包被液稀释,用微量加样器点于硝酸纤维素膜(NC)上,
2013年05月11日发布人:bohe221
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专门的加样器,大家都在一个实验室,但我一般都在晚上提,这样可以避免污染。另外,在处理所有实验用品的时候,一定要仔细、小心。我不知道你的实验条件,我做的结果还可以。可
2011年09月20日发布人:SOS