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比较难做到的。所以需要采取点特殊措施,我一般是这样做的:
首先吸干净原培养基,加入PBS洗,至少洗两遍,第二遍可以时间长一点,起到一定浸润作用,然后吸走,加入少量含EDTA的胰酶(以下简称YE)润洗,快速润洗完细胞生长面后吸走,然后加入适量的YE(我个人一般较常用量多加0.5-1ml),进行充
2011年12月01日发布人:四福晋
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移液管最精确的是哪个部位啊?比如准确量取3.5毫升的标准溶液要怎么操作啊?如果配置的溶液溶度是依次增大的要不要每次都润洗移液管?希望大家帮帮忙啊!!!!谢谢啦!,刻度吸管最精确的还是上面,如果你配置的溶液浓度依次增大,可以减少润洗的次数
2011年07月23日发布人:baohailin
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,第二遍可以时间长一点,起到一定浸润作用,然后吸走,加入少量含EDTA的胰酶(以下简称YE)润洗,快速润洗完细胞生长面后吸走,然后加入适量的YE(我个人一般较常用量多加0.5-1ml),进行充分的消化,保持在镜下适时观察。待较多细胞被消化下来悬浮于消
2015年06月10日发布人:吉吉0120
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一个标准溶液,一个湿润的烧杯,一个电炉,一个干燥箱,现在想用烧杯装标准溶液,怎么办?,用干燥箱干燥后,用标准溶液润洗下应该就可以了。,关键是面试官说这个不对,说直接润洗就行了,直接用标准溶液润洗是可以的。但溶液少时要考虑用量。,我觉得直接
2016年04月04日发布人:jkh123
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请问,液质连用仪中自动进样用的装盛样品溶液的小瓶子是怎么清洗的?是用10%的硝酸溶液浸泡吗?,一般用洗洁精清洗-清水冲洗-蒸馏水润洗。,进样小瓶我们用铬酸洗液泡洗,然后用纯水清洗烘干。,我们是先将用过的瓶子泡在硫酸和重铬酸钾配制的洗液中
2010年01月05日发布人:guoluren
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用1:3的硝酸泡着就行了。,自己的瓶子每次做实验应该是非常清楚的,不是说你泡了就洁净了,用玻璃的容器装洗瓶液,我们先用自来水冲洗,然后用20%的硝酸浸泡,再用自来水冲洗,最后用超纯水润洗。,先用水冲洗干净再用40%的硝酸泡24小时,拿起用纯净水冲洗再用超纯水洗干净就好,酸液可用
2015年09月23日发布人:风往尘香
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手动进样时,峰面积重现性很差,该如何改进???,安装了定量环吗?如果有定量环,至少进2倍体积的满环样品,重现性很容易有保证。
再一个就是尽量保持手法一致,比如针充满的体积,进样速度以及洗针次数、润洗次数等等。,谢谢啊,有定量环的。“至少
2011年08月27日发布人:灵动
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,再用去离子水洗,自己的瓶子每次做实验应该是非常清楚的,不是说你泡了就洁净了
用玻璃的容器装洗瓶液,用自来水冲洗干净,然后用1:3的硝酸泡着就行了。,我们先用自来水冲洗,然后用20%的硝酸浸泡,再用自来水冲洗,最后用超纯水润洗。,先用水冲洗干净再用40%的硝酸泡24小时,拿起用纯
2015年01月21日发布人:teddy
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流动相的比例有关。至于相对纯度有改变是不是在进样前针没有润洗或者稀释样品时出了问题啊!,同意楼上的
你的这个保留时间便化应该在情理之中,流动相温度微变化都是造成上述情况因素。至于纯度问题可能与你样品稀释有关,稀释时使用的是移液枪,操作也很小
2010年10月31日发布人:Doctorcbw
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色谱条件和昨天的一样,昨天出峰正常,可是今天怎么时间就变了呢?
ps:1.柱温有恒温箱所以排除温度的变化
2. 流动相是今天早上才配的,不过可能我犯了一个错误,配流动相溶液的时候没有用蒸馏水润洗容量瓶(容量瓶里有一些昨天洗
2011年09月03日发布人:命运--ses