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我倾向于第二种说法,坏死细胞的PS也是翻转的。[/color][/size],[size=2][color=Black]
第二种说法是不对的,第一种也没有说清楚,严格来说,磷脂酰丝氨酸在活细胞中分布于细胞质
2012年02月06日发布人:tuomu45
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,坏死细胞的PS也是翻转的。[/size],[size=2][color=Black]第二种说法是不对的,第一种也没有说清楚,严格来说,磷脂酰丝氨酸在活细胞中分布于细胞质膜内侧,在凋亡发生的早期阶段,会从质膜内侧翻转到外侧,从而可以被特异识别
2014年08月01日发布人:DCS
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新的PBS中(含肝素),反复冲洗。
5,把组织块种入培养瓶(前晚用1%明胶铺瓶,用前2hPBS洗一遍,完培洗一遍),加入培养液1.4ml,翻转瓶后放入培养箱。
6,2h翻转瓶,60h区组织块。
7,2天换液一次
2012年06月28日发布人:bs4665
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(protocol)
从300μl全血中分离DNA
时间:45分钟
预期产量:5-15μg DNA
细胞裂解
1. 将300μl全血(或骨髓)加入盛有900μl红细胞裂解液的1.5ml的微型离心管中。翻转使其充分混合,在室温下
2013年04月02日发布人:荒漠孤驴
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今天我用的植块法做的细胞的原代培养,刚开始过了4个小时翻转的,没想到组织块浮起来了;觉得这样太可惜了,又把他们翻转过来,又过了5个小时去翻转,照样又飘起来了,看来是没救了,怎么会这样
2012年04月14日发布人:克隆鱼
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可以高温烧一段时间,看还有用啊,也有可能是衬管或者是检测器那块脏了,,楼主,是什么检测器?说清楚你的色谱配置,可能是你上次的残留品,多走些时间可能就没有了!!或者干脆把色谱柱老化几个小时试试.,基线以下的峰,有的工作站可以实现峰翻转,翻上来
2010年09月18日发布人:yukilan
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针对原吸检测自来水中金属元素,塞曼扣背景与自吸收扣背景哪种较好,扣背景技术分为三种:塞曼扣背景、氘灯扣背景、自吸扣背景
整体上看:塞曼扣背景优点最多,适用于全波长,唯一的缺点是曲线向下翻转,线性范围小
氘灯扣背景:适用于300以下
2014年07月24日发布人:happydream
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如下图,我用的是novagen的His bind resin,没有过柱,按照操作手册上的方法在EP管里进行小批量的纯化,在4度翻转结合了1h,这里的上样量大约相当于500ul的菌液。从这个图的
2014年01月18日发布人:chengjie79
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19:08 编辑 [/i]],直接上样估计会有影响,它是吸附柱层析,依靠的是范德瓦尔斯力,这种力不是多强,会随着溶液解吸而流出。而且如果你上的样品如果溶解叶绿素呢????,树脂是新的吗,既然你还没上柱呢,那哪来的绿色杂质,树脂必须处理后才能用,否则杂质太多。多用几种有机溶
2010年07月11日发布人:Erica2088wr
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目的条带都没有,郁闷死了!!请大家帮我分析一下,是不是我得cDNA有问题,我在翻转之前没有测OD,只是跑了一下一般的琼脂糖电泳。有什么好的方法吗?[/b][/font][/size][/color],[size=4]很郁闷啊,呵呵。
根据
2011年09月22日发布人:panda王