-
认为封闭是全面的,但这种结合有时动态的不牢靠的,也就是说,封闭液对膜非特异性结合,结合是动态的.这时,我们加入抗体以后,由于抗体与目的蛋白的结合能力要强于或远强于封闭液,在这样的强势之下,封闭液的蛋白会被抗体所
2014年02月22日发布人:okhaha
-
[size=2][color=Black][b]
除了抗体原因,转膜是怕是western成败的最关键因素。
看到园子里好多好多人在求助转膜时间,园子为何总结出一系列分子量蛋白转膜的时间呢?少说这对于大多数新手来说,是极好的礼物,说大点
2013年05月16日发布人:woshiduiyan
-
好像是透明的,并且刚好今天奥林巴斯的工程师告诉说“将名片放在倒置显微镜下,镜下视野中看到的应该是朝下的一面。”那麽倒置显微镜下将小室正置在24孔板中看到的是否是室外面呢?
如果这样就可以直接在24孔板内动态观察,计数,染色?为何还要切下膜
2012年06月24日发布人:join
-
[size=2][color=Black][font=Verdana]
我一直用millipore的PVDF膜做Western的预实验,可是无论湿转还是半干转,markre总是转的不好,很容易转膜过度。而且不稳定,有时一个小时转的还可
2014年07月05日发布人:shkudo
-
来弥补金属镀膜的不足之处。这个方法的优点是:由于金属膜存在,可以得到较强的信号。
在动态研究中,不能用金属膜,因而喷涂抗静电剂是很有意义的。,多谢。不知道有没有一种扫描电子显微镜可以观察不导电的样品?我的担心是样品表面 coating
2009年05月27日发布人:英语你我他
-
。用Bio-rad的电转仪,全湿转,恒流105mA,3-3.5小时后,预染MARKER明显转到0.45uM的PVDF膜上,条带清楚。胶考染无蛋白,也无MARKER残留,但可见较弱的电泳通道,但膜用立春红染色不见任何蛋白,孵抗体后也不见荧光
2014年01月15日发布人:applebook=213
-
0.45um的PVDF 转膜
电转:200mA 100min
封闭1h
一抗浓度:按前人的经验做,验证没问题
TBST:5min 3次
二抗:1:5000 浓度没问题
TBST:5min 3次
目的条带总是出不来。
请教各位
2013年04月24日发布人:PPT
-
[size=2][color=Black]
本人前一段时间 电泳 转膜 都很好,转膜后预染marker 在膜上很清楚,丽春红染后蛋白条带很清晰。中间有事耽搁了 。最近做了一次,转膜后条带不是很清晰,marker 也很模糊,我开始怀疑
2014年03月27日发布人:veiwu
-
都说ICP的动态线性范围宽,大家是如何理解ICP的动态线性范围的,什么叫动态线性范围?它与哪些因素有联系?,动态线性范围是指分析校正曲线呈直线部分的范围,虽然ICP的动态线性范围宽,但标准浓度与样品浓度越接近或者说至少在同一数量级范围内
2015年03月18日发布人:small2011
-
7.3 cm,厚度0.75mm。
参数:恒流200mA,2 hours。。PVDF膜
我的目的蛋白有四个:160KD; 125KD ; 68KD ;(内参)43KD;
第一次和第二次实验都是在没什么理性认识的情况下做的,属于处女作,转移
2014年06月28日发布人:bangqi_k