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较为空闲的时间。今天就从BandScan这个软件开始。由于不是很熟悉制作过程,奋战一整天,终于完成了第一个实例学习。
BandScan是一个很常用的凝胶图像分析软件,我们用它重要是为了分析蛋白表达量。现在,我就以我自己表达的一个蛋白图,来示范这个软件分析的过程。最后结果是
2013年05月08日发布人:uaubc
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[size=2][color=Black][font=黑体]我最近做蛋白表达时,蛋白表达量尚可,但就是在超声波碎菌时老是破不碎,后来做了相同条件下未诱导菌体进行破碎,发现很容易破碎,请教各位大侠这是怎么一回事啊?
我的具体操作如下
2023年07月18日发布人:喇叭花
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,是不是我的转膜时间太长了,转膜的电流和转膜时间是怎样的关系??[/b][/color][/size],[size=2][color=Black]
凭我的经验是:转膜时间没问题,不知道你的蛋白表达量高么?如果是表达量低的问题你可以尝试
2013年04月24日发布人:PPT
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[size=2][color=Black][font=Impact]最近都在纯化带His标签的重组蛋白,发现了一个问题,就是在纯化重组蛋白时候,通常目的蛋白表达量越高,纯化难度就相对越低,相反,若目的蛋白表达量不是很高,纯化起来经常出现杂
2013年06月19日发布人:standup
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我检测一个药物对某蛋白的表达和分布的影响。
WB结果表明药物对该蛋白的表达量没有明显影响,但是膜蛋白中该蛋白的量明显降低;共聚焦结果显示不仅细胞膜中该蛋白的量降低,细胞质中也显著
2012年04月29日发布人:star#room
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我做的克隆表达目的片段与载体连接后酶切及PCR鉴定都是正确的,为什么表达量特别小呢,只见一条细线,大小应该是表达的融合蛋白,我优化过诱导时间,IPTG浓度,诱导温度但都无变化,我还换过几次载体
2013年07月20日发布人:bananapeople
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用western blot技术做了一个蛋白一个学期了也没做出来一幅像样的结果,我的蛋白表达量低怎么办,加大上样量还是不行,条带淡背景高,不知道把一抗四度2-3天,二抗4度
2013年05月10日发布人:lagua123
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,上清里的很少。之后做了很多的优化,包括调整IPTG的量,改变诱导温度和时间(但是没有低温摇床,诱导温度最低只能是室温),改变加诱导剂前菌体OD,目的就是想提高上清蛋白的表达量,但是效果不明显 --------考虑到GST蛋白变性复性的复杂
2013年06月03日发布人:摆渡客
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我做的克隆表达目的片段与载体连接后酶切及PCR鉴定都是正确的,为什么表达量特别小呢,只见一条细线,大小应该是表达的融合蛋白,我优化过诱导时间,IPTG浓度,诱导温度但都无变化,我还换过几次载体
2013年11月11日发布人:气泡
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大家好,我原来用pET28a载体在BL21(DE3)中表达,蛋白表达量很高,可是包涵体的形式,经过几次复性不成功后,决定更换载体和菌株来进行可溶性表达。结果原来表达
2014年01月15日发布人:mnstyle