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][/size],[size=2][color=Black]可能是电泳上样的时候有些样品没完全沉到上样孔内,分散到电极缓冲液中了。[/color][/size],[size=2][color=Black]
估计是电泳问题较大,感觉这几次跑
2013年08月31日发布人:zhihui小新
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先用胰酶消化细胞,分散成单细胞悬液,计数,然后稀释到需要的浓度,接种就OK了[/color][/size],[size=2][color=Black]
不同细胞接种量不同呀,一般转染需要60-80%左右的细胞吧,接种24小时后转染。
你自己需要摸索一下实验条件,就是细胞消化\计数,不同浓度接种
2012年06月20日发布人:阿k
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用水培法研究纳米颗粒的植物毒性,但纳米颗粒在营养液中团聚厉害,而且容易沉到容器底部,分散性差,不稳定,这严重影响了毒性的评价。我看文献用超声和BSA等稳定剂可以提高分散性,不知有没有做过类似工作的,一般用的是表面修饰的方法,纳米粒子表面能
2015年12月27日发布人:兔子
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教了我一种方法试了试 还不错 先在板内铺一点血清 再加细胞悬液进去 这样细胞会比较分散 如果对每个孔的细胞数有所要求 乘以相应倍数就可以了[/size],[size=2]
多谢楼上的战友,但是我想96孔的滴上血清或许有用,但对于24孔的恐怕
2015年11月14日发布人:吉吉0120
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,均须制备分散的细胞悬液。
1、 制备细胞悬液
对于悬液培养的细胞,可直接进行下面的步骤2(计数与计算过程)。如果计数对象为贴壁生长的细胞,首先需将培养物制备成细胞悬液。
1)、终止培养,将培养液吸出,用PBS洗培养物一次。
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2015年08月10日发布人:NBA
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100g大肠杆菌溶于1L破碎液里(破碎掖:50mM Tris-Cl(PH8.5) 5mM EDTA 0.14M NaCl),搅拌,发现菌液发粘,菌体不能够很好分散,用高压匀质机破碎,加压后
2014年06月14日发布人:free
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我最近养A549细胞,消化的时候很难把细胞分散成单个的细胞悬液,虽然大部分细胞是单个的,但总是会有两个、三四个细胞聚集在一起的情况。我消化的时候先用PBS洗两遍,然后加入0.25%胰蛋白酶,0.02%EDTA 覆盖瓶底,镜下观察细胞收缩
2009年09月21日发布人:ross_racheal
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培养物的细胞数量进行计数。不论计数的对象如何,均须制备分散的细胞悬液。
1、 制备细胞悬液
对于悬液培养的细胞,可直接进行下面的步骤2(计数与计算过程)。如果计数对象为贴壁生长的细胞,首先需将培养物制备成细胞悬液。
1)、终止培养
2013年01月11日发布人:yapuyapu
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今天看到一款包衣粉的配方中有磷脂的成分,印象中貌似薄膜包衣材料都是些HPMC,PEG之类的,不明白磷脂在包衣粉中有什么作用,磷脂具有乳化的作用,能说详细些吗,谢谢,磷脂具有乳化作用,可以是包衣液分散的更均匀,使得包出的来的片子表面更细腻。具体的作用你可以问供应商。或者你问卡乐康,他们肯定知道。
2014年03月17日发布人:momom
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用尿样做均相液液微萃取,除蛋白后仍然不能形成液滴,分散剂乙腈,乙醇,甲醇,丙酮都试过了,无效,萃取剂氯仿,四氯化碳现象一样,换做水样做就能形成,尿中的什么物质干扰了呢,该如何处理?,你想萃取尿液中啥东西
至少我要知道目标物质是什么吧,不知道楼主是要什么目标物质,我往尿中加了5种大黄,就想萃取这些,谢谢
2009年11月02日发布人:woaifou