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肝细胞培养
0.025%胰蛋白酶和0.02% EDTA 混合消化3~5 分钟,待细胞回缩,便停止消化,弃掉消化液,用BSS洗一二次,注入营养液,吹打,制成细胞悬液,再接种培养。>
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平板克隆
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动物细胞传代培养
,反复吹打贴壁细胞的培养瓶底部使消化好的细胞脱壁并分散,移入10ml离心管中,800 r/min,2min。 12 加入1-2ml培养基制成细胞悬液并计数。根据计数结果,按每个小方瓶2×105
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细胞内游离钙离子检测技术服务
X 100,(破膜用);加入1mmol/L氯化钙,吹打均匀,孵育1~10min,测定荧光即Fmax值。 4、加入EDTA,20μl(钙螯合剂),孵育1~10min,激发波长488nm测定荧光,即
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肺炎模型
导管。 将喉镜紧贴气管插管口 , 若喉镜表面有雾气形成表明插管成功。 注射菌液 : 气管插管成功后, 沿气管插管注射10μL鲍曼不动杆菌菌液, 吹打3次, 确保菌液全部进入小鼠肺部。 小鼠
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肺炎模型
导管。 将喉镜紧贴气管插管口 , 若喉镜表面有雾气形成表明插管成功。 注射菌液 : 气管插管成功后, 沿气管插管注射10μL鲍曼不动杆菌菌液, 吹打3次, 确保菌液全部进入小鼠肺部。 小鼠
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心肌成纤维细胞培养
%胰酶消化。无菌条件取出心脏D-hank's液(PBS也可)漂洗,剪碎心脏加入5倍体积消化液,37C水浴3-5min,反复吹打,静置,待自然沉降后弃去上清液。剩余沉淀再加入约5倍体积0.08
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总RNA提取技术服务
,每50~100mg 组织用1ml Trizol试剂对组织进行裂解;提取细胞RNA 时,先离心沉淀细胞,每5-10 ╳106 个细胞加1ml Trizol后,反复用枪吹打或剧烈振荡以裂解细胞; 2.
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细胞学实验服务--细胞培养
吸管轻轻吹打使细胞均匀,血球计数板计数,调节冻存液中细胞的zei终密度为5×106/ml~1×107/ml;将细胞分装入冻存管中,每管1~1.5 ml;在冻存管上标明细胞的名称、细胞代次、冻存时间及
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肝细胞培养
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