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,所有的蛋白应该都已经彻底解链打开了。这种情况可能是电泳时的电压偏低,在电泳前端的小分子量蛋白在向前泳动与自身扩散之间不平衡所造成的。将电压适当提高应该是可以解决。
何谓浓缩胶聚合不好??因为浓缩胶的浓度只有4-5%,因此,它凝固以后不会像分离胶那样那么有形,会有点像鼻涕一样烂乎乎的,这是正常的。样品在进入浓缩胶后是不会马上聚成一条细线
2013年04月26日发布人:abc816
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[size=2][color=Black][font=Impact]
接触western blot快三个月了,一直在捣鼓小分子量的蛋白,什么十几K的二十几K的。15%的胶也配了估摸有有几十板吧,可没有哪一次配完胶敢拍着胸脯说,嗯,这次的
2013年10月29日发布人:fklo83
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又跑了一个,让溴芬兰跑到一半就终止了电泳,但结果和上图一样,只是条带间距离更紧密一些,这个问题大家都没有见过吗?
只好自己顶一下了.[/color][/size],[size=2][color=Black]
小分子量的蛋白质是不容易跑好
2014年07月07日发布人:vvmmoy
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与有机化合物相当或者略高,会降低检测灵敏度。)
ECD:氮气N2,可以,不过柱效可能略差,氮气比氦气和氢气要便宜,可以降低检测成本
当然了还和分析什么物质有关,小分子量的气体作载气是有利的。,可以是可以。不过可能会影响到检测的性能
2011年07月16日发布人:emuchhh
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=2][color=Black]
我提的是胃组织的蛋白,转膜后的胶染色看后小分子量的蛋白都转过去了,所以βactin应该也转过去了.我的师兄用βactin抗体后,有的条带很清楚的出现,有的就没有条带,做的2次都是这样.其他同
2014年05月26日发布人:zranqi_1
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都有一定的要求,也就是说它一般只适用一定范围的胶,不是所有的胶都适合的。所以,你看一下你的MARKER上的说明,你所用的胶是不是在它的范围内。
【2】MARKER条带很容易受到溴酚蓝的影响,小分子量的更容易受到影响的。你可以这样试一下:和
2014年03月10日发布人:she
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一部分小分子量蛋白
3. 一般温度(室温20度左右),采用被动水化;温度过低,为了避免样品在胶条表面析出,采用主动水化。(现在一般都是主动水化因为IEF都带自冷却系统,恒温17-20度, 所以还是用主动水化比较好)[/color
2013年11月20日发布人:shkudo
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,28kDa的那条带可能是大蛋白降解的产物,也可能是一个无关但是部分序列类似的蛋白,具体情况就不知道了。做WB的时候心中默念小分子量的都是杂带就可以。[/color][/size],[quote]原帖由 [i]INK[/i] 于 2013-5-11
2013年05月11日发布人:toy
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分钟,45分钟,是Bio-Rad的mini型转膜仪.电泳后染胶条带明显,转膜后染胶可见小分子量处仍可见条带,随转膜时间延长,条带减弱.转膜时我用了两张膜,曝光后第一张膜上可见那条杂带和较弱的目的带,第二张膜上只见杂带无目的带,且杂带较第一张
2013年11月15日发布人:bangqi_k
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3.5cm,夹层胶到最顶端为2cm,积层胶大概为8mm
夹层胶的作用是阻挡一些大分子量的蛋白,使小分子量的肽段能够在分离胶内得到更好的呈现.
其实,三层胶是梯度胶的简化版本[/color][/size],[size=2][color
2014年07月05日发布人:庄梦蝶